中国组织工程研究

第一作者	发表时间	国家	干细胞类型	动物类型	鼠龄（周）	分组例数（n）	建模诱导
JIE^[9]	2022	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	7/8	10	10	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
JALALIE^[10]	2021	伊朗	UC-MSCs	C57BL/6	6/8	10	10	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
DENG^[11]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6/7	8	8	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
赵淑颖^[12]	2021	中国	UC-MSCs	ICR	8	14	14	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
SHEN^[13]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	7/8	25	25	环磷酰胺（首剂）	50 mg/kg	腹腔注射
								环磷酰胺（随后）	8 mg/kg
YANG^[14]	2019	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6	6	6	环磷酰胺	40 mg/kg/d	未描述
付霞霏^[15]	2013	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	8	20	20	透明带糖蛋白3（PZP3）	0.15 mL+0.15 mL	腹腔注射
PARK^[16]	2021	美国	BM-MSCs	C57BL/6	未描述	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白硫酚	30 mg/kg
彭静^[17]	2018	中国	BM-MSCs	C57BL/6	8/10	15	15	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
张莹莹^[18]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
AHMED^[19]	2017	埃及	BM-MSCs	C57BL/6	4/6	5	5	环磷酰胺	80 mg/kg	未描述
陈京京^[20]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
范雪^[21]	2016	中国	BM-MSCs	ICR	未描述	20	20	顺铂	6 mg/kg	腹腔注射
王毅峰^[22]	2016	中国	HCMNCs	SPF BALB/C	7/8	30	30	0.5 Gr钴	未描述	辐射
DANG^[23]	2015	中国	HCMNCs	BALB/C	7/8	20	20	0.5 Gr钴	未描述	辐射
包秀芳^[24]	2015	中国	HCMNCs	SPF昆明小鼠	8/10	40	40	半乳糖	半乳糖食物丸	饮食
LIU^[25]	2014	中国	HuMenSCs	C57BL/6	4/5	20	20	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
徐焱焱^[26]	2020	中国	HuMenSCs	C57BL/6	7	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
王臻^[27]	2017	中国	HuMenSCs	C57BL/6	8	30	30	顺铂	2 mg/kg	腹腔注射
孙芳^[28]	2021	中国	HuMenSCs	SPF昆明小鼠	6/8	9	9	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
赵达^[29]	2023	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	6	12	12	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
白塔吉^[30]	2022	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	4/5	5	5	表柔比星	10 mg/kg	腹腔注射
YIN^[31]	2018	中国	HP-MSCs	BALB/C	7/8	17	17	透明带糖蛋白3（PZP3）	50 nmol/L	皮下注射
蒋春艳^[32]	2014	中国	HA-MSCs	C57BL/6	8	10	10	4 Gy	1周	辐射
JIE^[9]	2022	C：POF组	NS	NS	尾静脉	①②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶		④⑧
JALALIE^[10]	2021	C：POF组	PBS	100 μL PBS	卵巢	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
DENG^[11]	2021	C：POF组	PBS	200 μL PBS	卵巢	②③⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
赵淑颖^[12]	2021	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁶
SHEN^[13]	2020	C：POF组	NS	0.2 mL	尾静脉	②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
YANG^[14]	2019	C：POF+PBS组	PBS	10 μL PBS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁵
付霞霏^[15]	2013	C：POF组	NS	10 μL NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
PARK^[16]	2021	C：POF组	PBS	10 μL PBS	卵巢	①	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁶
彭静^[17]	2018	C：POF组	NS	NS	尾静脉	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	2×10⁶
张莹莹^[18]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③⑤	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁷	尾静脉卵巢
AHMED^[19]	2017	C：POF组	BM-MSCs	0.5×10⁶	尾静脉	①②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组
陈京京^[20]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁴
范雪^[21]	2016	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑦	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	20 μL 1×10⁶
王毅峰^[22]	2016	C：POF组	DEMD	DEME	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	尾静脉：10 μL 1×10¹³
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	卵巢原位：10 μL 1×10¹³
DANG^[23]	2015	C：POF组	vehicle	10 μL DMEM	卵巢	②③④⑤	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	HCMNCs	10 μL 1×10⁷/μL
包秀芳^[24]	2015	C：POF组	HCMNCs	L-DMED	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组		10 μL HCMNCs
LIU^[25]	2014	C：POF组	未描述	未描述	尾静脉	②③	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	10 μL PBS+1×10⁴
徐焱焱^[26]	2020	C：POF组	PBS	PBS	卵巢	②	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	2×10⁶
王臻^[27]	2017	C：POF组	PBS	PBS	尾静脉	⑤⑥⑦	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 5×10⁷
孙芳^[28]	2021	C：POF组	未描述	未描述	卵巢	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 2×10⁶
赵达^[29]	2023	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③④	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	AD-MSCs	1×10⁹
白塔吉^[30]	2022	C：POF组	未描述	未描述	未描述	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	尾静脉：40 μL 5.5×10⁵
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	卵巢原位：40 μL 5.5×10⁵
YIN^[31]	2018	POF组	HP-MSCs	1×10⁶	未描述	②③⑤⑥⑦	无
POF+胎盘源性间充质干细胞组
蒋春艳^[32]	2014	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③	无
T：POF+羊膜源性间充质干细胞组	HA-MSCs	2×10⁷

第一作者	发表时间	国家	干细胞类型	动物类型	鼠龄（周）	分组例数（n）	建模诱导
JIE^[9]	2022	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	7/8	10	10	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
JALALIE^[10]	2021	伊朗	UC-MSCs	C57BL/6	6/8	10	10	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
DENG^[11]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6/7	8	8	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
赵淑颖^[12]	2021	中国	UC-MSCs	ICR	8	14	14	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
SHEN^[13]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	7/8	25	25	环磷酰胺（首剂）	50 mg/kg	腹腔注射
								环磷酰胺（随后）	8 mg/kg
YANG^[14]	2019	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6	6	6	环磷酰胺	40 mg/kg/d	未描述
付霞霏^[15]	2013	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	8	20	20	透明带糖蛋白3（PZP3）	0.15 mL+0.15 mL	腹腔注射
PARK^[16]	2021	美国	BM-MSCs	C57BL/6	未描述	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白硫酚	30 mg/kg
彭静^[17]	2018	中国	BM-MSCs	C57BL/6	8/10	15	15	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
张莹莹^[18]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
AHMED^[19]	2017	埃及	BM-MSCs	C57BL/6	4/6	5	5	环磷酰胺	80 mg/kg	未描述
陈京京^[20]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
范雪^[21]	2016	中国	BM-MSCs	ICR	未描述	20	20	顺铂	6 mg/kg	腹腔注射
王毅峰^[22]	2016	中国	HCMNCs	SPF BALB/C	7/8	30	30	0.5 Gr钴	未描述	辐射
DANG^[23]	2015	中国	HCMNCs	BALB/C	7/8	20	20	0.5 Gr钴	未描述	辐射
包秀芳^[24]	2015	中国	HCMNCs	SPF昆明小鼠	8/10	40	40	半乳糖	半乳糖食物丸	饮食
LIU^[25]	2014	中国	HuMenSCs	C57BL/6	4/5	20	20	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
徐焱焱^[26]	2020	中国	HuMenSCs	C57BL/6	7	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
王臻^[27]	2017	中国	HuMenSCs	C57BL/6	8	30	30	顺铂	2 mg/kg	腹腔注射
孙芳^[28]	2021	中国	HuMenSCs	SPF昆明小鼠	6/8	9	9	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
赵达^[29]	2023	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	6	12	12	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
白塔吉^[30]	2022	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	4/5	5	5	表柔比星	10 mg/kg	腹腔注射
YIN^[31]	2018	中国	HP-MSCs	BALB/C	7/8	17	17	透明带糖蛋白3（PZP3）	50 nmol/L	皮下注射
蒋春艳^[32]	2014	中国	HA-MSCs	C57BL/6	8	10	10	4 Gy	1周	辐射
JIE^[9]	2022	C：POF组	NS	NS	尾静脉	①②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶		④⑧
JALALIE^[10]	2021	C：POF组	PBS	100 μL PBS	卵巢	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
DENG^[11]	2021	C：POF组	PBS	200 μL PBS	卵巢	②③⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
赵淑颖^[12]	2021	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁶
SHEN^[13]	2020	C：POF组	NS	0.2 mL	尾静脉	②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
YANG^[14]	2019	C：POF+PBS组	PBS	10 μL PBS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁵
付霞霏^[15]	2013	C：POF组	NS	10 μL NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
PARK^[16]	2021	C：POF组	PBS	10 μL PBS	卵巢	①	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁶
彭静^[17]	2018	C：POF组	NS	NS	尾静脉	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	2×10⁶
张莹莹^[18]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③⑤	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁷	尾静脉卵巢
AHMED^[19]	2017	C：POF组	BM-MSCs	0.5×10⁶	尾静脉	①②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组
陈京京^[20]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁴
范雪^[21]	2016	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑦	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	20 μL 1×10⁶
王毅峰^[22]	2016	C：POF组	DEMD	DEME	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	尾静脉：10 μL 1×10¹³
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	卵巢原位：10 μL 1×10¹³
DANG^[23]	2015	C：POF组	vehicle	10 μL DMEM	卵巢	②③④⑤	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	HCMNCs	10 μL 1×10⁷/μL
包秀芳^[24]	2015	C：POF组	HCMNCs	L-DMED	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组		10 μL HCMNCs
LIU^[25]	2014	C：POF组	未描述	未描述	尾静脉	②③	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	10 μL PBS+1×10⁴
徐焱焱^[26]	2020	C：POF组	PBS	PBS	卵巢	②	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	2×10⁶
王臻^[27]	2017	C：POF组	PBS	PBS	尾静脉	⑤⑥⑦	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 5×10⁷
孙芳^[28]	2021	C：POF组	未描述	未描述	卵巢	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 2×10⁶
赵达^[29]	2023	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③④	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	AD-MSCs	1×10⁹
白塔吉^[30]	2022	C：POF组	未描述	未描述	未描述	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	尾静脉：40 μL 5.5×10⁵
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	卵巢原位：40 μL 5.5×10⁵
YIN^[31]	2018	POF组	HP-MSCs	1×10⁶	未描述	②③⑤⑥⑦	无
POF+胎盘源性间充质干细胞组
蒋春艳^[32]	2014	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③	无
T：POF+羊膜源性间充质干细胞组	HA-MSCs	2×10⁷

第一作者	发表时间	①	②	③	④	⑤	⑥	⑦	⑧	⑨	⑩
JIE^[9]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
JALALIE^[10]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DENG^[11]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵淑颖^[12]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
SHEN^[13]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YANG^[14]	2019	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
付霞霏^[15]	2013	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
PARK^[16]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
彭静^[17]	2018	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
张莹莹^[18]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
AHMED^[19]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
陈京京^[20]	2017	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
范雪^[21]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王毅峰^[22]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DANG^[23]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
包秀芳^[24]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
LIU^[25]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
徐焱焱^[26]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王臻^[27]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
孙芳^[28]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵达^[29]	2023	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
白塔吉^[30]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YIN^[31]	2018	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
蒋春艳^[32]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否

第一作者	发表时间	①	②	③	④	⑤	⑥	⑦	⑧	⑨	⑩
JIE^[9]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
JALALIE^[10]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DENG^[11]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵淑颖^[12]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
SHEN^[13]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YANG^[14]	2019	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
付霞霏^[15]	2013	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
PARK^[16]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
彭静^[17]	2018	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
张莹莹^[18]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
AHMED^[19]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
陈京京^[20]	2017	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
范雪^[21]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王毅峰^[22]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DANG^[23]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
包秀芳^[24]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
LIU^[25]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
徐焱焱^[26]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王臻^[27]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
孙芳^[28]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵达^[29]	2023	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
白塔吉^[30]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YIN^[31]	2018	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
蒋春艳^[32]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否

RR值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-
0.28（0.01-5.75）	骨髓源性间充质干细胞组	-
6.00（0.81-44.35）	21.60（2.22-210.18）^a	空白组/安慰剂组

RR值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-
0.28（0.01-5.75）	骨髓源性间充质干细胞组	-
6.00（0.81-44.35）	21.60（2.22-210.18）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-	-
13.01（0.28-603.59）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
5.26（0.13-212.33）	0.40（0.01-27.54）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
0.88（0.01-107.79）	0.07（0.00-12.52）	0.17（0.00-27.20）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.88（0.01-68.67）	0.07（0.00-8.28）	0.17（0.00-17.89）	1.00（0.00-267.82）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
36.64（0.08-17 544.69）	2.82（0.00-1 870.91）	6.97（0.01-4 155.34）	41.56（0.03-49 966.59）	41.59（0.05-37 268.64）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
1.56（0.00-935.90）	0.12（0.00-98.71）	0.30（0.00-220.01）	1.77（0.00-2 590.97）	1.77（0.00-1 948.53）	0.04（0.00-163.08）	羊膜源性间充质干细胞组	-
181.27（17.49-1 878.62）^a	13.93（0.63-309.60）	34.47（1.96-606.87）^a	205.63（3.07-13 773.14）^a	205.76（5.15-8 216.53）^a	4.95（0.02-1495.54）	116.12（0.30-44 715.63）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-	-
13.01（0.28-603.59）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
5.26（0.13-212.33）	0.40（0.01-27.54）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
0.88（0.01-107.79）	0.07（0.00-12.52）	0.17（0.00-27.20）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.88（0.01-68.67）	0.07（0.00-8.28）	0.17（0.00-17.89）	1.00（0.00-267.82）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
36.64（0.08-17 544.69）	2.82（0.00-1 870.91）	6.97（0.01-4 155.34）	41.56（0.03-49 966.59）	41.59（0.05-37 268.64）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
1.56（0.00-935.90）	0.12（0.00-98.71）	0.30（0.00-220.01）	1.77（0.00-2 590.97）	1.77（0.00-1 948.53）	0.04（0.00-163.08）	羊膜源性间充质干细胞组	-
181.27（17.49-1 878.62）^a	13.93（0.63-309.60）	34.47（1.96-606.87）^a	205.63（3.07-13 773.14）^a	205.76（5.15-8 216.53）^a	4.95（0.02-1495.54）	116.12（0.30-44 715.63）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
0.11（0.00-7.27）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
1.15（0.05-29.04）	10.07（0.12-865.33）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
30.28（0.60-1 515.49）	265.48（1.84-38274.42）^a	26.38（0.38-1811.74）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
0.16（0.00-38.52）	1.43（0.00-752.75）	0.14（0.00-42.28）	0.01（0.00-2.42）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
0.18（0.00-43.67）	1.56（0.00-849.38）	0.16（0.00-47.86）	0.01（0.00-2.74）	1.09（0.00-1508.82）	羊膜源性间充质干细胞组	-
0.06（0.01-0.41）^a	0.49（0.01-18.85）	0.05（0.00-0.62）^a	0.00（0.00-0.05）^a	0.34（0.00-55.75）	0.31（0.00-53.06）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
0.11（0.00-7.27）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
1.15（0.05-29.04）	10.07（0.12-865.33）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
30.28（0.60-1 515.49）	265.48（1.84-38274.42）^a	26.38（0.38-1811.74）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
0.16（0.00-38.52）	1.43（0.00-752.75）	0.14（0.00-42.28）	0.01（0.00-2.42）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
0.18（0.00-43.67）	1.56（0.00-849.38）	0.16（0.00-47.86）	0.01（0.00-2.74）	1.09（0.00-1508.82）	羊膜源性间充质干细胞组	-
0.06（0.01-0.41）^a	0.49（0.01-18.85）	0.05（0.00-0.62）^a	0.00（0.00-0.05）^a	0.34（0.00-55.75）	0.31（0.00-53.06）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-
0.80（0.12-5.28）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-
1.09×10⁶+06（5 503.48-2.17×10⁸）^a	1.37×10⁶+06（8 716.82-2.15×10⁸）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.23（0.04-1.31）	0.29（0.14-0.62）^a	0.00（0.00-0.00）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-
0.80（0.12-5.28）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-
1.09×10⁶+06（5 503.48-2.17×10⁸）^a	1.37×10⁶+06（8 716.82-2.15×10⁸）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.23（0.04-1.31）	0.29（0.14-0.62）^a	0.00（0.00-0.00）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
171.36（0.02-1.87^e+06）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.23（0.00-162 885.84）	0.00（0.00-1 172.90）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-
10.44（0.00-373 912.31）	0.06（0.00-2 851.83）	44.96（0.00-8.89×10⁷）	经血源性间充质干细胞组	-	-
267.47（0.01-9.55×10⁶）	1.56（0.00-72 874.16）	1 151.94（0.00-2.27×10⁹）	25.62（0.00-3.36×10⁶）	脂肪源性间充质干细胞组	-
577.39（1.00-334 646.16）^a	3.37（0.00-3 012.45）	2 486.74（0.02-3.53×10⁸）	55.31（0.01-230 335.66）	2.16（0.00-8 960.96）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
171.36（0.02-1.87^e+06）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.23（0.00-162 885.84）	0.00（0.00-1 172.90）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-
10.44（0.00-373 912.31）	0.06（0.00-2 851.83）	44.96（0.00-8.89×10⁷）	经血源性间充质干细胞组	-	-
267.47（0.01-9.55×10⁶）	1.56（0.00-72 874.16）	1 151.94（0.00-2.27×10⁹）	25.62（0.00-3.36×10⁶）	脂肪源性间充质干细胞组	-
577.39（1.00-334 646.16）^a	3.37（0.00-3 012.45）	2 486.74（0.02-3.53×10⁸）	55.31（0.01-230 335.66）	2.16（0.00-8 960.96）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
20.81（0.00-357 112.00）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
9.85（0.00-184 244.45）	0.47（0.00-47 263.95）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
11.23（0.00-3.57×10⁶）	0.54（0.00-654 237.56）	1.14（0.00-1.47×10⁶）	胎盘源性间充质干细胞组	-
153.92（0.66-35 772.33）	7.39（0.00-24 007.68）	15.63（0.00-56 586.26）	13.70（0.00-1.27×10⁶）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
20.81（0.00-357 112.00）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
9.85（0.00-184 244.45）	0.47（0.00-47 263.95）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
11.23（0.00-3.57×10⁶）	0.54（0.00-654 237.56）	1.14（0.00-1.47×10⁶）	胎盘源性间充质干细胞组	-
153.92（0.66-35 772.33）	7.39（0.00-24 007.68）	15.63（0.00-56 586.26）	13.70（0.00-1.27×10⁶）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
3.13（0.17-57.33）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.91（0.05-17.51）	0.29（0.01-8.87）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
0.58（0.02-14.35）	0.19（0.00-7.02）	0.64（0.02-25.14）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
2.71（0.06-116.60）	0.87（0.01-53.82）	2.98（0.05-191.75）	4.65（0.06-357.03）	胎盘源性间充质干细胞组	-
10.80（2.03-57.41）	3.46（0.32-37.48）	11.87（1.03-137.13）	18.53（1.20-285.80）	3.99（0.14-115.92）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
3.13（0.17-57.33）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.91（0.05-17.51）	0.29（0.01-8.87）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
0.58（0.02-14.35）	0.19（0.00-7.02）	0.64（0.02-25.14）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
2.71（0.06-116.60）	0.87（0.01-53.82）	2.98（0.05-191.75）	4.65（0.06-357.03）	胎盘源性间充质干细胞组	-
10.80（2.03-57.41）	3.46（0.32-37.48）	11.87（1.03-137.13）	18.53（1.20-285.80）	3.99（0.14-115.92）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
1.50（0.52-4.35）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-
0.47（0.15-1.44）	0.31（0.08-1.16）	经血源性间充质干细胞组	-	-
40.36（4.00-407.68）^a	26.90（2.41-299.76）^a	86.73（7.56-995.45）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.21（0.12-0.37）^a	0.14（0.06-0.34）^a	0.45（0.17-1.18）	0.01（0.00-0.05）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
1.50（0.52-4.35）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-
0.47（0.15-1.44）	0.31（0.08-1.16）	经血源性间充质干细胞组	-	-
40.36（4.00-407.68）^a	26.90（2.41-299.76）^a	86.73（7.56-995.45）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.21（0.12-0.37）^a	0.14（0.06-0.34）^a	0.45（0.17-1.18）	0.01（0.00-0.05）^a	空白组/安慰剂组

不同来源间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型疗效的网状Meta分析

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李哲 ¹ , 李萍 ¹ , 张超 ² , 郭广玲 ¹

中国组织工程研究 | 循证医学 2025,29(36): 7898-7908

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中国组织工程研究 | 循证医学 2025, 29(36): 7898-7908

不同来源间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型疗效的网状Meta分析

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李哲¹, 李萍¹, 张超², 郭广玲¹

作者信息

¹湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院），抗衰老中心，湖北省十堰市　442000

²湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院），循证医学中心，湖北省十堰市　442000

Li Zhe, Master candidate, Anti-Aging Center, Affiliated Hospital of Hubei University of Medicine (Taihe Hospital), Shiyan 442000, Hubei Province, China

李哲，女，1998年生，甘肃省白银市人，汉族，湖北医药学院在读硕士。

通讯作者:

郭广玲，硕士，副教授，研究生导师，湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院）抗衰老中心，湖北省十堰市　442000

A network meta-analysis of efficacy of mesenchymal stem cells from different sources in treatment of premature ovarian failure animal models

Zhe Li¹, Ping Li¹, Chao Zhang², Guangling Guo¹

Affiliations

¹Anti-Aging Center, Affiliated Hospital of Hubei University of Medicine (Taihe Hospital), Shiyan 442000, Hubei Province, China

²Evidence-Based Medicine Center, Affiliated Hospital of Hubei University of Medicine (Taihe Hospital), Shiyan 442000, Hubei Province, China

出版时间: 2025-12-28 doi: 10.12307/2025.533

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摘要

收起

目的：

近年来卵巢早衰呈现年轻化趋势，干细胞治疗已逐渐应用于临床工作。但因干细胞来源广泛，存在于各类组织中，其生物学特征及功能存在一定差异。文章通过比较不同来源的间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型的疗效，为干细胞临床应用提供依据。

方法：

计算机分别从PubMed、The Cochrane Library、EMbase外文数据库和中国知网、万方、维普、中国生物医学文献服务系统中文数据库中检索间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型实验，检索时限从各数据库建库之日起至2023-12-31。由2名研究者独立筛选文献、提取和分析数据。纳入研究均采用SYRCLE动物实验偏倚风险评估表进行质量评价。主要结局指标：卵泡刺激素、雌二醇、黄体生成素及各级卵泡数；次要结局指标：妊娠率。在评价纳入研究的偏倚风险后使用Stata 17.0软件进行网状Meta分析、绘图和制表。

结果：

最终纳入24项动物实验研究，文献整体质量为中等质量，包括7种不同来源的间充质干细胞，分别为脐带源性间充质干细胞（UC-MSCs）、经血源性间充质干细胞（HuMenSCs）、胎盘源性间充质干细胞（HP-MSCs）、人脐血源性间充质干细胞（HCMNCs）、骨髓源性间充质干细胞（BM-MSCs）、脂肪源性间充质干细胞（AD-MSCs）和羊膜源性间充质干细胞（HA-MSCs）。网状Meta结果分析显示：①与空白组相比，各实验组在提高实验动物妊娠率、雌二醇，降低卵泡刺激素、黄体生成素，增加各级卵泡数，减少闭锁卵泡数方面，不同来源的间充质干细胞均有疗效。②累计排序曲线下面积图可得出，提高雌二醇水平的疗效排名前3位的为：脐带源性间充质干细胞组（72.7%）>脂肪源性间充质干细胞组（72.6%）>经血源性间充质干细胞组（71.7%）；③降低卵泡刺激素水平的疗效排名前3位的为：脂肪源性间充质干细胞组（96.3%）>人脐血源性间充质干细胞组（65.4%）>脐带源性间充质干细胞组（63.9%）；④降低黄体生成素水平的疗效排名前3位的为：脂肪源性间充质干细胞组（100.0%）>脐带源性间充质干细胞组（51.6%）>人脐血源性间充质干细胞组（46.8%）；⑤增加原始卵泡数的疗效排名前3位的为：人脐血源性间充质干细胞组（76.3%）>脐带源性间充质干细胞组（75.5%）>经血源性间充质干细胞组（57.5%）；⑥增加初级卵泡数的疗效排名前3位的为：脐带源性间充质干细胞组（75.3%）>脂肪源性间充质干细胞组（53.0%）>胎盘源性间充质干细胞组（51.7%）；⑦增加次级卵泡数的疗效排名前3位的为：脂肪源性间充质干细胞组（76.1%）>经血源性间充质干细胞组（66.8%）>脐带源性间充质干细胞组（66.5%）；⑧减少闭锁卵泡数的疗效排名前3位的为：脂肪源性间充质干细胞组（99.9%）>骨髓源性间充质干细胞组（68.1%）>脐带源性间充质干细胞组（53.4%）。

结论：

①针对卵巢早衰的动物模型，此网状Meta分析结果得出各种干细胞移植治疗均不同程度优于空白组/安慰剂组且疗效相似。②综合各结局指标及干细胞的组间比较发现，目前脐带源性间充质干细胞的应用最广泛，脂肪源性间充质干细胞疗效最佳，未来需要更多高质量的临床试验数据进一步验证。

关键词

干细胞 / 卵巢早衰 / 动物实验 / 网状Meta分析 / 卵泡数 / 雌二醇 / 卵泡刺激素 / 黄体生成素

Abstract

收起

OBJECTIVE:

Premature ovarian failure has manifested a trend of younger, and stem cell therapy has been progressively implemented in clinical practice in recent years. Nevertheless, given the extensive range of sources and variegated existence of stem cells in diverse tissues, certain disparities prevail in their biological characteristics and functions. In this paper, the therapeutic efficacies of dissimilar sources of mesenchymal stem cells on animal models of premature ovarian failure were contrasted, with the aim of providing a basis for the clinical application of stem cells.

METHODS:

The animal model experiments of mesenchymal stem cell therapy for premature ovarian failure were retrieved from PubMed, The Cochrane Library, and EMbase, as well as Chinese databases such as CNKI, WanFang, VIP, and China Biomedical Literature Service. The search period extended from the inception to December 31, 2023. Two researchers independently screened the literature, extracted and analyzed the data. The quality of the included studies was evaluated by means of the SYRCLE animal experiment bias risk assessment table. Main outcome measures: Follicle stimulating hormone, estradiol, luteinizing hormone, the quantity of follicles at all levels. Secondary outcome measure: Pregnancy rate. Network meta-analysis, mapping, and tabulation were executed using Stata 17.0 software after assessing the risk of bias in the included studies.

RESULTS:

Totally 24 animal experiment studies were incorporated, and the overall quality of the literature was mediocre, encompassing 7 distinct sources of mesenchymal stem cells. They were umbilical cord-derived mesenchymal stem cells, menstrual blood-derived mesenchymal stem cells, placenta-derived mesenchymal stem cells, human cord blood-derived mesenchymal stem cells, bone marrow-derived mesenchymal stem cells, adipose-derived mesenchymal stem cells, and amnio-derived mesenchymal stem cells. The network meta-analysis demonstrated that (1) in contrast to the blank group, mesenchymal stem cells from various sources were effective in enhancing the pregnancy rate and estradiol, reducing follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone, augmenting the number of follicles at all levels, and diminishing the number of atretic follicles. (2) According to the area map under the cumulative sequencing curve, the three stem cells with the most prominent efficacy in improving estradiol levels were umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (72.7%) > adipose-derived mesenchymal stem cells (72.6%) > menstrual blood-derived mesenchymal stem cells (71.7%). (3) The three kinds of stem cells with the highest efficacy in reducing follicle-stimulating hormone levels were the adipose-derived mesenchymal stem cells (96.3%) > human cord blood-derived mesenchymal stem cells (65.4%) > umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (63.9%). (4) The three kinds of stem cells with the highest efficacy in reducing luteinizing hormone levels were adipose-derived mesenchymal stem cells (100.0%) > umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (51.6%) > human cord blood-derived mesenchymal stem cells (46.8%). (5) The top three kinds of stem cells for increasing the number of primordial follicles were human cord blood-derived mesenchymal stem cells (76.3%) > umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (75.5%) > menstrual blood-derived mesenchymal stem cells (57.5%). (6) The top three kinds of stem cells for increasing the number of primary follicles were umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (75.3%) > adipose-derived mesenchymal stem cells (53.0%) > the placenta-derived mesenchymal stem cells (51.7%). (7) The top three kinds of stem cells for increasing the number of secondary follicles were adipose-derived mesenchymal stem cells (76.1%) > menstrual blood-derived mesenchymal stem cells (66.8%) > umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (66.5%). (8) The top three kinds of stem cells in reducing the number of atretic follicles were adipose-derived mesenchymal stem cells (99.9%) > bone marrow-derived mesenchymal stem cells (68.1%) > umbilical cord-derived mesenchymal stem cells (53.4%).

CONCLUSION:

(1) For animal models of premature ovarian failure, the results of the network meta-analysis disclosed that various stem cell transplantation treatments were preponderant over the blank or placebo group to varying extents, and the efficacies were comparable. (2) The results indicated that umbilical cord-derived mesenchymal stem cells were the most frequently utilized and adipose-derived mesenchymal stem cells were the most potent. More high-quality experimental study data are requisite in the future for further validation.

Key words

stem cells / premature ovarian failure / animal experiments / network meta-analysis / follicular number / estradiol / follicle-stimulating hormone / luteinizing hormone

引用本文

李哲, 李萍, 张超, 郭广玲. 不同来源间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型疗效的网状Meta分析. 中国组织工程研究, 2025 , 29 (36) : 7898 -7908 . DOI: 10.12307/2025.533

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正文

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0　引言　Introduction

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卵巢早衰是一种严重影响女性生理和心理健康的内分泌疾病，常发生于年龄低于40周岁的育龄期妇女，其特点是促性腺激素的高表达（超过40 U/L）和雌激素的低表达^[1]。卵巢早衰的临床症状以月经不调、闭经和生育能力下降为主要特征的卵巢功能丧失。卵巢早衰的具体发病机制尚不清楚，其病因复杂，可能是由遗传学因素、自身免疫性因素、酶源因素、促性腺激素及其受体异常、医源性因素造成^[2-3]。目前对卵巢早衰的预防和治疗措施极为有限，为有效恢复女性患者卵巢功能及生育能力，临床上常规使用激素类药物，但治疗效果不理想且药物不良反应大。

间充质干细胞是一种多能干细胞，具有强大的增殖、修复能力和多向分化潜能^[4]。近年来，干细胞移植已成为卵巢早衰治疗的研究热点之一。多项研究表明间充质干细胞是治疗卵巢早衰最有效的方法^[5]。间充质干细胞广泛分布于人体全身结缔组织和器官间质中，可以从骨髓、脐带脐血、胎盘、羊水、骨膜、脂肪组织和经血，甚至脑组织中提取，同时易于分离、培养和扩增^[1]。间充质干细胞的治疗过程不是由单因素调节完成的，而是由复杂的生物学调控组成。在特定因子的诱导下，间充质干细胞迁移到受损卵巢后，通过旁分泌等作用调节卵巢细胞的增殖、凋亡、免疫、自噬、氧化应激和纤维化，重建受损组织局部微环境，并通过调节免疫应答参与受损组织的修复过程，逐渐成为临床治疗卵巢早衰的新方法^[6]。

随着干细胞诊疗技术的发展，研究发现不同来源的干细胞移植治疗卵巢早衰都具有改善患者的临床症状、恢复女性卵巢功能的作用。目前动物实验和临床应用中多是单一干细胞组与空白组或安慰剂组之间进行直接比较，缺乏不同干细胞类型治疗效果之间的间接比较，何种类型的干细胞是临床应用中的最优选择尚不明确。

网状Meta分析可以综合分析多种干预措施的有效性和安全性，为临床诊断和治疗提供更准确、有效的循证医学证据。因此，文章采用网状Meta分析评价不同类型干细胞移植治疗卵巢早衰有效性的动物实验，为今后干细胞移植的临床应用及种类选择提供相应的循证学依据。

1　资料和方法　Data and methods

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1.1　资料来源

1.1.1　检索者

第一作者。

1.1.2　资料库

PubMed、EMbase、The Cochrane Library、中国知网、万方、维普和中国生物医学文献服务系统数据库。

1.1.3　检索词

中文检索词：“间充质干细胞，干细胞，卵巢早衰，早发性卵巢功能不全”。英文检索词：“mesenchymal stem cells，premature ovarian failure，premature ovarian insufficiency，MSCs，POF，POI”。

1.1.4　检索时限

各数据库建库起至2023-12-31，同时追溯纳入研究的参考文献，进行数据补充。

1.1.5　文献检索式

以PubMed数据库为例，具体检索式见图1。

1.2　纳入与排除标准

1.2.1　纳入标准

①研究对象：雌性小鼠；②卵巢早衰或卵巢功能不全造模成功的动物模型；③干预措施：治疗组采用不同来源的干细胞治疗，对照组采用空白对照、生理盐水、生理血清或PBS缓冲液治疗；④结局指标：妊娠率、雌二醇、卵泡刺激素、黄体生成素、原始卵泡数、初级卵泡数、次级卵泡数和闭锁卵泡数；⑤随机对照动物实验，中文及英文文献。

1.2.2　排除标准

①重复性研究；②研究数据缺失或不明确；③会议文章和综述性文章；④实验动物为大鼠或其他动物。

1.3　文献筛选与资料提取

由2名研究者独立筛选文献、提取数据和分析核对。进行筛选时，首先阅读文献标题和摘要，排除明显不符合纳入标准的研究后进一步阅读全文，确定是否最终纳入该文献。

1.4　纳入研究的质量评价

对纳入的全部研究采用SYRCLE动物实验偏倚风险评估表进行评价^[7]：①序列产生是否充分；②各组基线特征是否相同；③分配隐藏是否充分；④实验动物分配是否随机化；⑤是否对动物饲养者和研究者实施盲法；⑥结果评估是否符合随机性；⑦是否对结果评价者实施盲法；⑧数据报告是否不完整；⑨结果报告是否符合选择性；⑩是否存在其他偏倚。评估结果用“是”“否”“不确定”分别代表低偏倚风险、高偏倚风险和不确定偏倚风险。经过筛选，纳入的全部文献均为中等质量文献。

1.5　结局指标

基线指标：①一般信息包括研究题目、第一作者、发表时间、国家等；②研究对象的基本特征：动物类型、鼠龄、例数等；③干预措施包括卵巢早衰建模诱导方式、干细胞类型、数量及移植方案等。主要结局指标包括卵泡刺激素、雌二醇、黄体生成素、原始卵泡数、初级卵泡数、次级卵泡数及闭锁卵泡数。次要结局指标包括妊娠率。

1.6　统计学分析

不同文献实验结论数值单位不同，通过数据单位换算统一单位后再进行分析^[8]。计数资料均采用相对危险度（relative Risk，RR）及95%可信区间（confidence interval，CI），计量资料采用均数差（mean difference，MD）以及95%CI，所有数据均采用Stata 17.0软件（https://www.stata.com/）进行网状Meta分析，P < 0.05为差异有显著性意义。绘制相关网络证据图、进行一致性检验、绘制比较-校正漏斗图。通过累计排序曲线下面积（surface under the cumulative ranking，SUCRA）对各种干预措施的结局指标进行排序，直接观察各种干预措施对结局指标优劣的排序概率。纳入10个研究以上时，绘制漏斗图评估发表偏倚。

2　结果　Results

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2.1　文献检索结果

初次检索得到530篇文献，经过初筛后获得136篇文献，阅读全文后最终得到24篇文献符合纳入标准^[9-32]。文献筛选流程见图2。

2.2　纳入研究的基本特征和偏倚风险评价结果

共纳入24篇文献^[9-32]，共704只实验动物，实验组352只，对照组352只。纳入研究的基本特征见表1，纳入研究偏倚风险评价结果见表2。

2.3　不同干预措施治疗卵巢早衰结局指标变化情况

2.3.1　不同干预措施下实验动物的妊娠率的网状Meta分析结果

共有3篇研究^[9,16,19]，不同干预措施的网络证据图，如图3A。因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：骨髓源性间充质干细胞组（89.7%）>脐带源性间充质干细胞组（58.1%）>空白组/安慰剂组（2.3%）。结果表明，BM-MSCs在提高实验动物妊娠率方面，效果可能最好，见图4A。网状Meta分析结果表明，共产生3组两两比较，其中骨髓源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较差异有显著性意义（P < 0.05），脐带源性间充质干细胞组与骨髓源性间充质干细胞组，脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组差异没有显著性意义，见表3。

2.3.2　不同干预措施下实验动物雌二醇的网状Meta分析结果

共有20篇研究^{[9-15,18-26,29-32]}，不同干预措施网络证据，如图3B。因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：脐带源性间充质干细胞组（72.7%）>脂肪源性间充质干细胞组（72.6%）>经血源性间充质干细胞组（71.7%）>羊膜源性间充质干细胞组（62.4%）>人脐血源性间充质干细胞组（48.9%）>骨髓源性间充质干细胞组（36.6%）>胎盘源性间充质干细胞组（29.2%）>空白组/安慰剂组（5.9%）。结果表明，脐带源性间充质干细胞在提高实验动物雌二醇方面，效果可能最好，见图4B。网状Meta分析结果表明，共产生28组两两比较，其中脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，人脐血源性间充质干细胞与空白组/安慰剂组比较，经血源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，脂肪源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异均有显著性意义（P < 0.05），其他各组之间差异没有显著性意义，见表4。

2.3.3　不同干预措施下实验动物卵泡刺激素的网状Meta分析结果

共有16篇研究^{[9-15,18,20,22-24,29-30]}，不同干预措施网络证据，如图3C。因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：脂肪源性间充质干细胞组（96.3%）>人脐血源性间充质干细胞组（65.4%）>脐带源性间充质干细胞组（63.9%）>羊膜源性间充质干细胞组（39.0%）>胎盘源性间充质干细胞组（37.0%）>骨髓源性间充质干细胞组（31.2%）>空白组/安慰剂组（17.2%）。结果表明，脂肪源性间充质干细胞在降低实验动物卵泡刺激素方面，效果可能最好，见图4C。网状Meta分析结果表明，共产生21组两两比较，其中脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，骨髓源性间充质干细胞组与人脐血源性间充质干细胞组比较，人脐血源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，脂肪源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异均有显著性意义（P < 0.05），其他各组之间差异没有显著性意义，见表5。

2.3.4　不同干预措施下实验动物黄体生成素的网状Meta分析结果

共有4篇研究^[9,22-24,29]，不同干预措施网络证据，见图3D。因为各研究之间未形成闭合环，故未进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：脂肪源性间充质干细胞组（100.0%）>脐带源性间充质干细胞组（51.6%）>人脐血源性间充质干细胞组（46.8%）>空白组/安慰剂组（1.6%）。结果表明，脂肪源性间充质干细胞在降低实验动物黄体生成素方面，效果可能最好，见图4D。网状Meta分析结果表明，共产生6组两两比较，其中脐带源性间充质干细胞组与人脐血源性间充质干细胞组比较，人脐血源性间充质干细胞组与脂肪源性间充质干细胞组比较，人脐血源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，脂肪源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异有显著性意义（P < 0.05），其他各组差异无显著性意义，见表6。

2.3.5　不同干预措施下实验动物原始卵泡数的网状Meta分析结果

共有12篇研究^{[9-10,12,14-15,17-18,21,23,27-28,30]}，不同干预措施网络证据，见图3E。SUCRA概率排序结果依次为：人脐血源性间充质干细胞组（76.3%）>脐带源性间充质干细胞组（75.5%）>经血源性间充质干细胞组（57.5%）>骨髓源性间充质干细胞组（36.0%）>脂肪源性间充质干细胞组（33.0%）>空白组/安慰剂组（21.8%）。结果表明，人脐血源性间充质干细胞组在提高实验动物原始卵泡数可能最好，见图4E。网状Meta分析结果表明，脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异有显著性意义（P < 0.05），其他各组之间差异均无显著性意义，见表7。

2.3.6　不同干预措施下实验动物初级卵泡数的网状Meta分析结果

共有10篇研究^{[10-12,14-15,17,27-28,30-31]}，不同干预措施网络证据，如图3F。SUCRA概率排序结果依次为：脐带源性间充质干细胞组（75.3%）>脂肪源性间充质干细胞组（53.0%）>胎盘源性间充质干细胞组（51.7%）>经血源性间充质干细胞组（47.0%）>空白组/安慰剂组（23.1%）。结果表明，脐带源性间充质干细胞在提高实验动物初级卵泡数可能最好，见图4F。不同干预措施下实验动物初级卵泡数的网状Meta分析结果表明，各组之间差异均无显著性意义，见表8。

2.3.7　不同干预措施下实验动物次级卵泡数的网状Meta分析结果

共有11篇研究^{[10-12,14-15,17,21,27-28,30-31]}，不同干预措施网络证据，如图3G。因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：脂肪源性间充质干细胞组（76.1%）>经血源性间充质干细胞组（66.8%）>脐带源性间充质干细胞组（66.5%）>胎盘源性间充质干细胞组（43.0%）>骨髓源性间充质干细胞组（39.5%）>空白组/安慰剂组（8.2%）。结果表明，脂肪源性间充质干细胞在提高实验动物次级卵泡数可能最好，见图4G。网状Meta分析结果表明，共产生15组两两比较，其中脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，经血源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，脂肪源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异均有显著性意义（P < 0.05），其他各组之间差异无显著性意义，见表9。

2.3.8　不同干预措施下实验动物闭锁卵泡数的网状Meta分析结果

共有6篇研究^{[9,11-12,17,28,30]}，不同干预措施网络证据，如图3H。因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。SUCRA概率排序结果依次为：脂肪源性间充质干细胞组（99.9%）>骨髓源性间充质干细胞组（68.1%）>脐带源性间充质干细胞组（53.4%）>经血源性间充质干细胞组（27.3%）>空白组/安慰剂组（1.2%）。结果表明，脂肪源性间充质干细胞在降低实验动物闭锁卵泡数可能最好，见图4H。网状Meta分析结果表明，共产生15组两两比较，其中脐带源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，脐带源性间充质干细胞组与脂肪源性间充质干细胞组比较，骨髓源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，骨髓源性间充质干细胞组与脂肪源性间充质干细胞组比较，经血源性间充质干细胞组与脂肪源性间充质干细胞组比较，脂肪源性间充质干细胞组与空白组/安慰剂组比较，差异均有显著性意义（P < 0.05），其他各组之间差异无显著性意义，见表10。

2.4　不同干预措施治疗卵巢早衰的发表偏倚风险分析

因为各研究之间未形成闭合环，故不进行一致性分析。漏斗图结果表明，研究中存在散点位于漏斗图的下端不完全对称的现象，故表明该研究可能存在一定的发表偏倚或小样本效应分析，见图5。

3　讨论　Discussion

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卵巢作为性腺器官，从女性的青春期至绝经前，形态和功能呈现出周期性变化。卵泡的发育、成熟、排出和黄体形成及退化，每一阶段均体现卵巢储备功能的高低。育龄期女性发生卵巢功能衰退，伴随不同程度的围绝经症状时，表明女性已经达到卵巢早衰^[33]。卵巢早衰带来一系列并发症，如骨质疏松、血脂异常及心脑血管患病风险上升，给育女性带来了严重的生理及心理损伤，也逐渐呈现出年轻化的趋势^[34]。国内外研究表明，激素替代疗法作为临床治疗卵巢早衰的方法被证实可减轻因雌激素缺乏引起的围绝经期临床症状，但因其无法抑制卵泡刺激素的升高，故不能有效恢复受损的卵巢功能^[35]。相反，长期激素序贯治疗可能会出现严重消化道反应，刺激某些激素敏感性恶性肿瘤的生长，提高患乳腺癌及卵巢癌的风险^[36]。

干细胞治疗最早应用于骨与软骨的修复，现在已经逐渐扩展至2型糖尿病、帕金森、慢性萎缩性胃炎及衰老症等多系统疾病的临床治疗中^[37]。随着再生医学的发展，干细胞移植为治疗女性卵巢早衰提供了新的临床途径。干细胞作为一类具有自我更新的多潜能细胞，生物学性能稳定、增殖分化能力强，在一定条件下可再生各组织和器官，还独有极低免疫原性和强大的免疫调节功能^[37]，可以在某些诱导因子作用下进行定向迁移，对特定受损组织进行修复。基于间充质干细胞在疾病动物模型治疗过程中的积极作用和试验性的临床前研究，越来越多的临床试验开始验证间充质干细胞治疗卵巢早衰的有效性和安全性^[38]。

3.1　证据总结

通过检索数据库发现，已有传统Meta分析证实干细胞移植治疗卵巢早衰的疗效^[39]，其中脐带源性间充质干细胞移植可以修复小鼠卵巢组织，改善小鼠内分泌功能^[40]。但干细胞来源广泛，不同来源的间充质干细胞治疗卵巢早衰的机制既有共同途径^[41]，又各有其侧重点。骨髓源性间充质干细胞是最先发现的间充质干细胞种类以及器官移植治疗的关键干细胞^[42]。脐带源性间充质干细胞对T细胞增殖具有抑制作用，这种作用与骨髓源性间充质干细胞相似，并且没有发现很高的致瘤风险^[43]。脐带源性间充质干细胞移植通过减少含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶3（cysteinylaspartate specific proteinase-3，CASPASE-3）来抑制卵巢早衰大鼠卵巢的凋亡，进而改善其卵巢的形态和功能^[39]。脐带源性间充质干细胞移植到卵巢早衰的小鼠体内，可以通过调节富半胱氨酸蛋白61（cysteine-rich 61，CYR61）和结缔组织生长因子在局部的表达^[44]。与骨髓源性间充质干细胞相比，脂肪源性间充质干细胞具有较强的增殖能力和自我更新能力，在长期培养中表现出较高的稳定性啊，虽没有特异性标记，但表达出了CD34，CD14和CD45^[45]。研究报道，脂肪源性间充质干细胞可以改善卵巢的雌激素，卵泡激素的水平，而且通过对促性腺激素释放激素受体（gonadotropin-releasing hormone receptor，GnRHR）蛋白的上调，进而介导GnRHR对生殖轴的作用，促进卵泡的数量，修复卵巢结构及功能^[46-48]。经血源性间充质干细胞是一种较为新颖的治疗手段，它来源安全性更可靠，相比其他干细胞在卵巢修复方面更具有优势性^[49]。在表比柔星诱导的卵巢早衰，模型中，发现通过移植经血源性间充质干细胞可以抑制生长阻滞和DNA损伤诱导蛋白45（growth arrest and DNA damage-inducible 45，Gadd45b）的表达，减少CDC2/CyclinB1复合体活性的抑制，促进颗粒细胞由G₂期转向M期。通过抑制Gadd45b的表达，可以减少颗粒细胞的凋亡^[50]。脐血源性间充质干细胞^[51-53]、胎盘源性间充质干细胞^[54-57]、羊膜源性间充质干细胞^[58-60]，这些干细胞来源大多亦通过抑制凋亡、促进增殖及归巢途径发挥作用。

文章评价分析的结局指标主要包括调节激素水平和改善各级卵泡数量两方面。依据累计排序曲线下面积图可得出，提高雌二醇水平的疗效排名靠前的干细胞为：脐带源性间充质干细胞、脂肪源性间充质干细胞和经血源性间充质干细胞；降低卵泡刺激素和黄体生成素水平的疗效排名靠前的干细胞为：脂肪源性间充质干细胞、脐带源性间充质干细胞和人脐血源性间充质干细胞；增加各级卵泡数量的疗效方面不同来源的间充质干细胞都有疗效，其中脐带源性间充质干细胞和脂肪源性间充质干细胞效果最佳；在减少闭锁卵泡数的疗效排名中脂肪源性间充质干细胞更具有优势。从文章结果可以看出，不同种类干细胞在不同的结局指标的疗效具有一定差异性，如降低卵泡刺激素和黄体生成素以及减少闭锁卵泡数方面，脂肪源性间充质干细胞优于脐带源性间充质干细胞，但在增加原始卵泡数和初级卵泡数方面脐带源性间充质干细胞优于脂肪源性间充质干细胞。故今后干细胞的选择和应用上可以有针对性选择合适的种类，更好地达到治疗效果。

3.2　研究局限性

干细胞的临床应用是目前较为前沿的疾病治疗手段，无论是动物实验还是临床试验，可以获取的样本量相较于传统的治疗方式都较少，文章虽得出了基本结论，但仍需要后续大量的数据支持及反复实验验证。文章检索的数据库有限，所纳入的文献仅为中英文文献，缺少其他语种的文献数据支持。研究纳入的动物模型为雌性小鼠，其他动物模型因样本量过少，未能进行分析讨论。

3.3　临床适用性及对未来研究的启示

目前干细胞治疗卵巢早衰在动物实验及临床治疗上逐渐开始应用。文章通过对不同来源的间充质干细胞治疗卵巢早衰动物模型的疗效及安全性进行评价，分析不同来源干细胞之间疗效的差异，对将来间充质干细胞种类选择及针对性的临床应用提供循证医学参考依据。

3.4　结论

目前卵巢早衰的治疗中，干细胞作为一种新的治疗手段已成为实验及临床的研究热点，可调节激素水平，改善围绝经期临床症状，提高卵巢储备功能。文章结果得出不同来源的干细胞移植治疗均不同程度优于空白组/安慰剂组且疗效相似。综合各结局指标及组间比较发现，目前脐带源性间充质干细胞的应用最广泛，脂肪源性间充质干细胞疗效最佳。但由于纳入研究质量和方法学的局限性，未来需要更多高质量的试验研究数据进一步验证结论。

基金

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十堰市科技局科研项目(22Y46)

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文献

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2025年第29卷第36期

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doi: 10.12307/2025.533

接收时间：2024-06-04
首发时间：2026-04-02
出版时间：2025-12-28

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出版历史

收稿日期：2024-06-04
修回日期：2024-08-24
录用日期：2024-07-22

基金

Shiyan Science and Technology Bureau Research Project(22Y46)

十堰市科技局科研项目(22Y46)

作者信息

¹湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院），抗衰老中心，湖北省十堰市　442000

²湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院），循证医学中心，湖北省十堰市　442000

通讯作者:

郭广玲，硕士，副教授，研究生导师，湖北医药学院附属医院（十堰市太和医院）抗衰老中心，湖北省十堰市　442000

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科 Family	属数 Number of genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)	属 Genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)
鹅膏菌科Amanitaceae	2	11	5.26	鹅膏菌属 Amanita	10	4.78
小菇科 Mycenaceae	2	12	5.74	丝盖伞属 Inocybe	5	2.39
多孔菌科 Polyporaceae	8	14	6.70	蜡蘑属 Laccaria	5	2.39
红菇科 Russulaceae	3	23	11.00	小皮伞属 Marasmius	6	2.87
				小菇属 Mycena	11	5.26
				光柄菇属 Pluteus	5	2.39
				红菇属 Russula	17	8.13
				栓菌属 Trametes	5	2.39

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TxT

第一作者	发表时间	国家	干细胞类型	动物类型	鼠龄（周）	分组例数（n）	建模诱导
JIE^[9]	2022	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	7/8	10	10	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
JALALIE^[10]	2021	伊朗	UC-MSCs	C57BL/6	6/8	10	10	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
DENG^[11]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6/7	8	8	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
赵淑颖^[12]	2021	中国	UC-MSCs	ICR	8	14	14	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
SHEN^[13]	2021	中国	UC-MSCs	C57BL/6	7/8	25	25	环磷酰胺（首剂）	50 mg/kg	腹腔注射
								环磷酰胺（随后）	8 mg/kg
YANG^[14]	2019	中国	UC-MSCs	C57BL/6	6	6	6	环磷酰胺	40 mg/kg/d	未描述
付霞霏^[15]	2013	中国	UC-MSCs	SPF BALB/C	8	20	20	透明带糖蛋白3（PZP3）	0.15 mL+0.15 mL	腹腔注射
PARK^[16]	2021	美国	BM-MSCs	C57BL/6	未描述	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白硫酚	30 mg/kg
彭静^[17]	2018	中国	BM-MSCs	C57BL/6	8/10	15	15	环磷酰胺	50 mg/kg	腹腔注射
张莹莹^[18]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
AHMED^[19]	2017	埃及	BM-MSCs	C57BL/6	4/6	5	5	环磷酰胺	80 mg/kg	未描述
陈京京^[20]	2017	中国	BM-MSCs	ICR	6	7	7	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
范雪^[21]	2016	中国	BM-MSCs	ICR	未描述	20	20	顺铂	6 mg/kg	腹腔注射
王毅峰^[22]	2016	中国	HCMNCs	SPF BALB/C	7/8	30	30	0.5 Gr钴	未描述	辐射
DANG^[23]	2015	中国	HCMNCs	BALB/C	7/8	20	20	0.5 Gr钴	未描述	辐射
包秀芳^[24]	2015	中国	HCMNCs	SPF昆明小鼠	8/10	40	40	半乳糖	半乳糖食物丸	饮食
LIU^[25]	2014	中国	HuMenSCs	C57BL/6	4/5	20	20	环磷酰胺	70 mg/kg	腹腔注射
徐焱焱^[26]	2020	中国	HuMenSCs	C57BL/6	7	6	6	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	30 mg/kg
王臻^[27]	2017	中国	HuMenSCs	C57BL/6	8	30	30	顺铂	2 mg/kg	腹腔注射
孙芳^[28]	2021	中国	HuMenSCs	SPF昆明小鼠	6/8	9	9	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
赵达^[29]	2023	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	6	12	12	环磷酰胺	120 mg/kg	腹腔注射
								白消安	12 mg/kg
白塔吉^[30]	2022	中国	AD-MSCs	SPF昆明小鼠	4/5	5	5	表柔比星	10 mg/kg	腹腔注射
YIN^[31]	2018	中国	HP-MSCs	BALB/C	7/8	17	17	透明带糖蛋白3（PZP3）	50 nmol/L	皮下注射
蒋春艳^[32]	2014	中国	HA-MSCs	C57BL/6	8	10	10	4 Gy	1周	辐射
JIE^[9]	2022	C：POF组	NS	NS	尾静脉	①②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶		④⑧
JALALIE^[10]	2021	C：POF组	PBS	100 μL PBS	卵巢	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
DENG^[11]	2021	C：POF组	PBS	200 μL PBS	卵巢	②③⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
赵淑颖^[12]	2021	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁶
SHEN^[13]	2020	C：POF组	NS	0.2 mL	尾静脉	②③	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
YANG^[14]	2019	C：POF+PBS组	PBS	10 μL PBS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	2×10⁵
付霞霏^[15]	2013	C：POF组	NS	10 μL NS	尾静脉	②③⑤⑥⑦	无
T：POF+脐带源性间充质干细胞组	UC-MSCs	1×10⁶
PARK^[16]	2021	C：POF组	PBS	10 μL PBS	卵巢	①	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁶
彭静^[17]	2018	C：POF组	NS	NS	尾静脉	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	2×10⁶
张莹莹^[18]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③⑤	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁷	尾静脉卵巢
AHMED^[19]	2017	C：POF组	BM-MSCs	0.5×10⁶	尾静脉	①②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组
陈京京^[20]	2017	C：POF组	NS	NS	未描述	②③	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	5×10⁴
范雪^[21]	2016	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③⑤⑦	无
T：POF+骨髓源性间充质干细胞组	BM-MSCs	20 μL 1×10⁶
王毅峰^[22]	2016	C：POF组	DEMD	DEME	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	尾静脉：10 μL 1×10¹³
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	人脐血源性间充质干细胞组	卵巢原位：10 μL 1×10¹³
DANG^[23]	2015	C：POF组	vehicle	10 μL DMEM	卵巢	②③④⑤	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组	HCMNCs	10 μL 1×10⁷/μL
包秀芳^[24]	2015	C：POF组	HCMNCs	L-DMED	未描述	②③④	无
T：POF+人脐血源性间充质干细胞组		10 μL HCMNCs
LIU^[25]	2014	C：POF组	未描述	未描述	尾静脉	②③	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	10 μL PBS+1×10⁴
徐焱焱^[26]	2020	C：POF组	PBS	PBS	卵巢	②	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	2×10⁶
王臻^[27]	2017	C：POF组	PBS	PBS	尾静脉	⑤⑥⑦	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 5×10⁷
孙芳^[28]	2021	C：POF组	未描述	未描述	卵巢	⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+经血源性间充质干细胞组	HuMenSCs	200 μL 2×10⁶
赵达^[29]	2023	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③④	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	AD-MSCs	1×10⁹
白塔吉^[30]	2022	C：POF组	未描述	未描述	未描述	②③⑤⑥⑦⑧	无
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	尾静脉：40 μL 5.5×10⁵
T：POF+脂肪源性间充质干细胞组	脂肪源性间充质干细胞组	卵巢原位：40 μL 5.5×10⁵
YIN^[31]	2018	POF组	HP-MSCs	1×10⁶	未描述	②③⑤⑥⑦	无
POF+胎盘源性间充质干细胞组
蒋春艳^[32]	2014	C：POF组	NS	NS	尾静脉	②③	无
T：POF+羊膜源性间充质干细胞组	HA-MSCs	2×10⁷

第一作者

发表时间

国家

干细胞类型

动物类型

鼠龄（周）

分组例数（n）

建模诱导

药品

剂量

给药方式

JIE^[9]

2022

中国

UC-MSCs

SPF BALB/C

7/8

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

30 mg/kg

JALALIE^[10]

2021

伊朗

UC-MSCs

C57BL/6

6/8

环磷酰胺

50 mg/kg

腹腔注射

DENG^[11]

2021

中国

UC-MSCs

C57BL/6

6/7

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

30 mg/kg

赵淑颖^[12]

2021

中国

UC-MSCs

ICR

环磷酰胺

70 mg/kg

腹腔注射

SHEN^[13]

2021

中国

UC-MSCs

C57BL/6

7/8

环磷酰胺（首剂）

50 mg/kg

腹腔注射

环磷酰胺（随后）

8 mg/kg

YANG^[14]

2019

中国

UC-MSCs

C57BL/6

环磷酰胺

40 mg/kg/d

未描述

付霞霏^[15]

2013

中国

UC-MSCs

SPF BALB/C

透明带糖蛋白3（PZP3）

0.15 mL+0.15 mL

腹腔注射

PARK^[16]

2021

美国

BM-MSCs

C57BL/6

未描述

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白硫酚

30 mg/kg

彭静^[17]

2018

中国

BM-MSCs

C57BL/6

8/10

环磷酰胺

50 mg/kg

腹腔注射

张莹莹^[18]

2017

中国

BM-MSCs

ICR

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

12 mg/kg

AHMED^[19]

2017

埃及

BM-MSCs

C57BL/6

4/6

环磷酰胺

80 mg/kg

未描述

陈京京^[20]

2017

中国

BM-MSCs

ICR

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

12 mg/kg

范雪^[21]

2016

中国

BM-MSCs

ICR

未描述

顺铂

6 mg/kg

腹腔注射

王毅峰^[22]

2016

中国

HCMNCs

SPF BALB/C

7/8

0.5 Gr钴

未描述

辐射

DANG^[23]

2015

中国

HCMNCs

BALB/C

7/8

0.5 Gr钴

未描述

辐射

包秀芳^[24]

2015

中国

HCMNCs

SPF昆明小鼠

8/10

半乳糖

半乳糖食物丸

饮食

LIU^[25]

2014

中国

HuMenSCs

C57BL/6

4/5

环磷酰胺

70 mg/kg

腹腔注射

徐焱焱^[26]

2020

中国

HuMenSCs

C57BL/6

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

30 mg/kg

王臻^[27]

2017

中国

HuMenSCs

C57BL/6

顺铂

2 mg/kg

腹腔注射

孙芳^[28]

2021

中国

HuMenSCs

SPF昆明小鼠

6/8

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

赵达^[29]

2023

中国

AD-MSCs

SPF昆明小鼠

环磷酰胺

120 mg/kg

腹腔注射

白消安

12 mg/kg

白塔吉^[30]

2022

中国

AD-MSCs

SPF昆明小鼠

4/5

表柔比星

10 mg/kg

腹腔注射

YIN^[31]

2018

中国

HP-MSCs

BALB/C

7/8

透明带糖蛋白3（PZP3）

50 nmol/L

皮下注射

蒋春艳^[32]

2014

中国

HA-MSCs

C57BL/6

4 Gy

1周

辐射

第一作者

发表时间

分组

结局指标

不良反应

组别

移植方案

移植干细胞数量/PBS或NS体积

移植部位

JIE^[9]

2022

C：POF组

尾静脉

①②③

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

1×10⁶

④⑧

JALALIE^[10]

2021

C：POF组

PBS

100 μL PBS

卵巢

②③⑤⑥⑦

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

1×10⁶

DENG^[11]

2021

C：POF组

PBS

200 μL PBS

卵巢

②③⑥⑦⑧

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

1×10⁶

赵淑颖^[12]

2021

C：POF组

尾静脉

②③⑤⑥⑦⑧

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

2×10⁶

SHEN^[13]

2020

C：POF组

0.2 mL

尾静脉

②③

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

1×10⁶

YANG^[14]

2019

C：POF+PBS组

PBS

10 μL PBS

尾静脉

②③⑤⑥⑦

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

2×10⁵

付霞霏^[15]

2013

C：POF组

10 μL NS

尾静脉

②③⑤⑥⑦

无

T：POF+脐带源性间充质干细胞组

UC-MSCs

1×10⁶

PARK^[16]

2021

C：POF组

PBS

10 μL PBS

卵巢

①

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

BM-MSCs

5×10⁶

彭静^[17]

2018

C：POF组

尾静脉

⑤⑥⑦⑧

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

BM-MSCs

2×10⁶

张莹莹^[18]

2017

C：POF组

未描述

②③⑤

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

BM-MSCs

5×10⁷

尾静脉卵巢

AHMED^[19]

2017

C：POF组

BM-MSCs

0.5×10⁶

尾静脉

①②③

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

陈京京^[20]

2017

C：POF组

未描述

②③

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

BM-MSCs

5×10⁴

范雪^[21]

2016

C：POF组

尾静脉

②③⑤⑦

无

T：POF+骨髓源性间充质干细胞组

BM-MSCs

20 μL 1×10⁶

王毅峰^[22]

2016

C：POF组

DEMD

DEME

未描述

②③④

无

T：POF+人脐血源性间充质干细胞组

人脐血源性间充质干细胞组

尾静脉：10 μL 1×10¹³

T：POF+人脐血源性间充质干细胞组

人脐血源性间充质干细胞组

卵巢原位：10 μL 1×10¹³

DANG^[23]

2015

C：POF组

vehicle

10 μL DMEM

卵巢

②③④⑤

无

T：POF+人脐血源性间充质干细胞组

HCMNCs

10 μL 1×10⁷/μL

包秀芳^[24]

2015

C：POF组

HCMNCs

L-DMED

未描述

②③④

无

T：POF+人脐血源性间充质干细胞组

10 μL HCMNCs

LIU^[25]

2014

C：POF组

未描述

尾静脉

②③

无

T：POF+经血源性间充质干细胞组

HuMenSCs

10 μL PBS+1×10⁴

徐焱焱^[26]

2020

C：POF组

PBS

卵巢

②

无

T：POF+经血源性间充质干细胞组

HuMenSCs

2×10⁶

王臻^[27]

2017

C：POF组

PBS

尾静脉

⑤⑥⑦

无

T：POF+经血源性间充质干细胞组

HuMenSCs

200 μL 5×10⁷

孙芳^[28]

2021

C：POF组

未描述

卵巢

⑤⑥⑦⑧

无

T：POF+经血源性间充质干细胞组

HuMenSCs

200 μL 2×10⁶

赵达^[29]

2023

C：POF组

尾静脉

②③④

无

T：POF+脂肪源性间充质干细胞组

AD-MSCs

1×10⁹

白塔吉^[30]

2022

C：POF组

未描述

②③⑤⑥⑦⑧

无

T：POF+脂肪源性间充质干细胞组

脂肪源性间充质干细胞组

尾静脉：40 μL 5.5×10⁵

T：POF+脂肪源性间充质干细胞组

脂肪源性间充质干细胞组

卵巢原位：40 μL 5.5×10⁵

YIN^[31]

2018

POF组

HP-MSCs

1×10⁶

未描述

②③⑤⑥⑦

无

POF+胎盘源性间充质干细胞组

蒋春艳^[32]

2014

C：POF组

尾静脉

②③

无

T：POF+羊膜源性间充质干细胞组

HA-MSCs

2×10⁷

第一作者	发表时间	①	②	③	④	⑤	⑥	⑦	⑧	⑨	⑩
JIE^[9]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
JALALIE^[10]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DENG^[11]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵淑颖^[12]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
SHEN^[13]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YANG^[14]	2019	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
付霞霏^[15]	2013	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
PARK^[16]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
彭静^[17]	2018	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
张莹莹^[18]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
AHMED^[19]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
陈京京^[20]	2017	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
范雪^[21]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王毅峰^[22]	2016	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
DANG^[23]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
包秀芳^[24]	2015	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
LIU^[25]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
徐焱焱^[26]	2020	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
王臻^[27]	2017	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
孙芳^[28]	2021	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
赵达^[29]	2023	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
白塔吉^[30]	2022	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否
YIN^[31]	2018	不确定	是	不确定	不确定	不确定	不确定	不确定	否	是	否
蒋春艳^[32]	2014	不确定	是	不确定	是	不确定	不确定	不确定	否	是	否

第一作者

发表时间

①

②

③

④

⑤

⑥

⑦

⑧

⑨

⑩

JIE^[9]

2022

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

JALALIE^[10]

2021

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

DENG^[11]

2021

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

赵淑颖^[12]

2021

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

SHEN^[13]

2020

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

YANG^[14]

2019

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

付霞霏^[15]

2013

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

PARK^[16]

2021

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

彭静^[17]

2018

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

张莹莹^[18]

2017

不确定

是

不确定

否

是

否

AHMED^[19]

2017

不确定

是

不确定

否

是

否

陈京京^[20]

2017

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

范雪^[21]

2016

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

王毅峰^[22]

2016

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

DANG^[23]

2015

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

包秀芳^[24]

2015

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

LIU^[25]

2014

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

徐焱焱^[26]

2020

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

王臻^[27]

2017

不确定

是

不确定

否

是

否

孙芳^[28]

2021

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

赵达^[29]

2023

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

白塔吉^[30]

2022

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

YIN^[31]

2018

不确定

是

不确定

否

是

否

蒋春艳^[32]

2014

不确定

是

不确定

是

不确定

否

是

否

RR值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-
0.28（0.01-5.75）	骨髓源性间充质干细胞组	-
6.00（0.81-44.35）	21.60（2.22-210.18）^a	空白组/安慰剂组

RR值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

0.28（0.01-5.75）

骨髓源性间充质干细胞组

6.00（0.81-44.35）

21.60（2.22-210.18）^a

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-	-
13.01（0.28-603.59）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
5.26（0.13-212.33）	0.40（0.01-27.54）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
0.88（0.01-107.79）	0.07（0.00-12.52）	0.17（0.00-27.20）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.88（0.01-68.67）	0.07（0.00-8.28）	0.17（0.00-17.89）	1.00（0.00-267.82）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
36.64（0.08-17 544.69）	2.82（0.00-1 870.91）	6.97（0.01-4 155.34）	41.56（0.03-49 966.59）	41.59（0.05-37 268.64）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
1.56（0.00-935.90）	0.12（0.00-98.71）	0.30（0.00-220.01）	1.77（0.00-2 590.97）	1.77（0.00-1 948.53）	0.04（0.00-163.08）	羊膜源性间充质干细胞组	-
181.27（17.49-1 878.62）^a	13.93（0.63-309.60）	34.47（1.96-606.87）^a	205.63（3.07-13 773.14）^a	205.76（5.15-8 216.53）^a	4.95（0.02-1495.54）	116.12（0.30-44 715.63）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

13.01（0.28-603.59）

骨髓源性间充质干细胞组

5.26（0.13-212.33）

0.40（0.01-27.54）

人脐血源性间充质干细胞组

0.88（0.01-107.79）

0.07（0.00-12.52）

0.17（0.00-27.20）

经血源性间充质干细胞组

0.88（0.01-68.67）

0.07（0.00-8.28）

0.17（0.00-17.89）

1.00（0.00-267.82）

脂肪源性间充质干细胞组

36.64（0.08-17 544.69）

2.82（0.00-1 870.91）

6.97（0.01-4 155.34）

41.56（0.03-49 966.59）

41.59（0.05-37 268.64）

胎盘源性间充质干细胞组

1.56（0.00-935.90）

0.12（0.00-98.71）

0.30（0.00-220.01）

1.77（0.00-2 590.97）

1.77（0.00-1 948.53）

0.04（0.00-163.08）

羊膜源性间充质干细胞组

181.27（17.49-1 878.62）^a

13.93（0.63-309.60）

34.47（1.96-606.87）^a

205.63（3.07-13 773.14）^a

205.76（5.15-8 216.53）^a

4.95（0.02-1495.54）

116.12（0.30-44 715.63）

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-	-
0.11（0.00-7.27）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
1.15（0.05-29.04）	10.07（0.12-865.33）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-	-
30.28（0.60-1 515.49）	265.48（1.84-38274.42）^a	26.38（0.38-1811.74）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-	-
0.16（0.00-38.52）	1.43（0.00-752.75）	0.14（0.00-42.28）	0.01（0.00-2.42）	胎盘源性间充质干细胞组	-	-
0.18（0.00-43.67）	1.56（0.00-849.38）	0.16（0.00-47.86）	0.01（0.00-2.74）	1.09（0.00-1508.82）	羊膜源性间充质干细胞组	-
0.06（0.01-0.41）^a	0.49（0.01-18.85）	0.05（0.00-0.62）^a	0.00（0.00-0.05）^a	0.34（0.00-55.75）	0.31（0.00-53.06）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

0.11（0.00-7.27）

骨髓源性间充质干细胞组

1.15（0.05-29.04）

10.07（0.12-865.33）

人脐血源性间充质干细胞组

30.28（0.60-1 515.49）

265.48（1.84-38274.42）^a

26.38（0.38-1811.74）

脂肪源性间充质干细胞组

0.16（0.00-38.52）

1.43（0.00-752.75）

0.14（0.00-42.28）

0.01（0.00-2.42）

胎盘源性间充质干细胞组

0.18（0.00-43.67）

1.56（0.00-849.38）

0.16（0.00-47.86）

0.01（0.00-2.74）

1.09（0.00-1508.82）

羊膜源性间充质干细胞组

0.06（0.01-0.41）^a

0.49（0.01-18.85）

0.05（0.00-0.62）^a

0.00（0.00-0.05）^a

0.34（0.00-55.75）

0.31（0.00-53.06）

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-
0.80（0.12-5.28）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-
1.09×10⁶+06（5 503.48-2.17×10⁸）^a	1.37×10⁶+06（8 716.82-2.15×10⁸）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.23（0.04-1.31）	0.29（0.14-0.62）^a	0.00（0.00-0.00）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

0.80（0.12-5.28）

人脐血源性间充质干细胞组

1.09×10⁶+06（5 503.48-2.17×10⁸）^a

1.37×10⁶+06（8 716.82-2.15×10⁸）^a

脂肪源性间充质干细胞组

0.23（0.04-1.31）

0.29（0.14-0.62）^a

0.00（0.00-0.00）^a

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
171.36（0.02-1.87^e+06）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.23（0.00-162 885.84）	0.00（0.00-1 172.90）	人脐血源性间充质干细胞组	-	-	-
10.44（0.00-373 912.31）	0.06（0.00-2 851.83）	44.96（0.00-8.89×10⁷）	经血源性间充质干细胞组	-	-
267.47（0.01-9.55×10⁶）	1.56（0.00-72 874.16）	1 151.94（0.00-2.27×10⁹）	25.62（0.00-3.36×10⁶）	脂肪源性间充质干细胞组	-
577.39（1.00-334 646.16）^a	3.37（0.00-3 012.45）	2 486.74（0.02-3.53×10⁸）	55.31（0.01-230 335.66）	2.16（0.00-8 960.96）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

171.36（0.02-1.87^e+06）

骨髓源性间充质干细胞组

0.23（0.00-162 885.84）

0.00（0.00-1 172.90）

人脐血源性间充质干细胞组

10.44（0.00-373 912.31）

0.06（0.00-2 851.83）

44.96（0.00-8.89×10⁷）

经血源性间充质干细胞组

267.47（0.01-9.55×10⁶）

1.56（0.00-72 874.16）

1 151.94（0.00-2.27×10⁹）

25.62（0.00-3.36×10⁶）

脂肪源性间充质干细胞组

577.39（1.00-334 646.16）^a

3.37（0.00-3 012.45）

2 486.74（0.02-3.53×10⁸）

55.31（0.01-230 335.66）

2.16（0.00-8 960.96）

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
20.81（0.00-357 112.00）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
9.85（0.00-184 244.45）	0.47（0.00-47 263.95）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
11.23（0.00-3.57×10⁶）	0.54（0.00-654 237.56）	1.14（0.00-1.47×10⁶）	胎盘源性间充质干细胞组	-
153.92（0.66-35 772.33）	7.39（0.00-24 007.68）	15.63（0.00-56 586.26）	13.70（0.00-1.27×10⁶）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

20.81（0.00-357 112.00）

经血源性间充质干细胞组

9.85（0.00-184 244.45）

0.47（0.00-47 263.95）

脂肪源性间充质干细胞组

11.23（0.00-3.57×10⁶）

0.54（0.00-654 237.56）

1.14（0.00-1.47×10⁶）

胎盘源性间充质干细胞组

153.92（0.66-35 772.33）

7.39（0.00-24 007.68）

15.63（0.00-56 586.26）

13.70（0.00-1.27×10⁶）

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-	-
3.13（0.17-57.33）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-	-
0.91（0.05-17.51）	0.29（0.01-8.87）	经血源性间充质干细胞组	-	-	-
0.58（0.02-14.35）	0.19（0.00-7.02）	0.64（0.02-25.14）	脂肪源性间充质干细胞组	-	-
2.71（0.06-116.60）	0.87（0.01-53.82）	2.98（0.05-191.75）	4.65（0.06-357.03）	胎盘源性间充质干细胞组	-
10.80（2.03-57.41）	3.46（0.32-37.48）	11.87（1.03-137.13）	18.53（1.20-285.80）	3.99（0.14-115.92）	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

3.13（0.17-57.33）

骨髓源性间充质干细胞组

0.91（0.05-17.51）

0.29（0.01-8.87）

经血源性间充质干细胞组

0.58（0.02-14.35）

0.19（0.00-7.02）

0.64（0.02-25.14）

脂肪源性间充质干细胞组

2.71（0.06-116.60）

0.87（0.01-53.82）

2.98（0.05-191.75）

4.65（0.06-357.03）

胎盘源性间充质干细胞组

10.80（2.03-57.41）

3.46（0.32-37.48）

11.87（1.03-137.13）

18.53（1.20-285.80）

3.99（0.14-115.92）

空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）
脐带源性间充质干细胞组	-	-	-	-
1.50（0.52-4.35）	骨髓源性间充质干细胞组	-	-	-
0.47（0.15-1.44）	0.31（0.08-1.16）	经血源性间充质干细胞组	-	-
40.36（4.00-407.68）^a	26.90（2.41-299.76）^a	86.73（7.56-995.45）^a	脂肪源性间充质干细胞组	-
0.21（0.12-0.37）^a	0.14（0.06-0.34）^a	0.45（0.17-1.18）	0.01（0.00-0.05）^a	空白组/安慰剂组

MD值（95%CI）

脐带源性间充质干细胞组

1.50（0.52-4.35）

骨髓源性间充质干细胞组

0.47（0.15-1.44）

0.31（0.08-1.16）

经血源性间充质干细胞组

40.36（4.00-407.68）^a

26.90（2.41-299.76）^a

86.73（7.56-995.45）^a

脂肪源性间充质干细胞组

0.21（0.12-0.37）^a

0.14（0.06-0.34）^a

0.45（0.17-1.18）

0.01（0.00-0.05）^a

空白组/安慰剂组