微生物学报

Sample	Sobsindex	Chao1index	ACEindex	Shannonindex	Simpsonindex	Coverageindex (%)
DCD1	92	93.5	92.73	0.65	0.81	99.99
DCD2	114	114.0	114.16	0.64	0.83	99.99
DCD3	99	99.0	99.29	0.62	0.84	99.99

Sample	Sobsindex	Chao1index	ACEindex	Shannonindex	Simpsonindex	Coverageindex (%)
DCD1	92	93.5	92.73	0.65	0.81	99.99
DCD2	114	114.0	114.16	0.64	0.83	99.99
DCD3	99	99.0	99.29	0.62	0.84	99.99

Phylum	Class	Order	Family	Genus	Strain number
Pseudomonadota	Gammaproteobacteria	Oceanospirillales	Halomonadaceae	Halomonas	201
Vreelandella	32
Halovibrio	6
Aidingimonas	2
Salicola	1
Hahellaceae	Halospina	1
Alteromonadales	Idiomarinaceae	Idiomarina	15
Chromatiales	Ectothiorhodospiraceae	Spiribacter	1
Pseudomonadales	Pseudomonadaceae	Pseudomonas	4
Marinobacteracea	Marinobacter	1
Alphaproteobacteria	Hyphomicrobiales	Nitrobacteraceae	Bradyrhizobium	35
Bacillota	Bacilli	Bacillales	Bacillaceae	Bacillus	102
Virgibacillus	108
Oceanobacillus	19
Alkalibacillus	14
Halobacillus	10
Gracilibacillus	1
Pseudalkalibacillus	1
Staphylococcaceae	Staphylococcus	34
Planococcaceae	Planococcus	2
Actinomycetota	Actinomycetes	Micrococcales	Micrococcaceae	Kocuria	2
Balneolota	Balneolia	Balneolales	Balneolaceae	Fodinibius	1

Phylum	Class	Order	Family	Genus	Strain number
Pseudomonadota	Gammaproteobacteria	Oceanospirillales	Halomonadaceae	Halomonas	201
Vreelandella	32
Halovibrio	6
Aidingimonas	2
Salicola	1
Hahellaceae	Halospina	1
Alteromonadales	Idiomarinaceae	Idiomarina	15
Chromatiales	Ectothiorhodospiraceae	Spiribacter	1
Pseudomonadales	Pseudomonadaceae	Pseudomonas	4
Marinobacteracea	Marinobacter	1
Alphaproteobacteria	Hyphomicrobiales	Nitrobacteraceae	Bradyrhizobium	35
Bacillota	Bacilli	Bacillales	Bacillaceae	Bacillus	102
Virgibacillus	108
Oceanobacillus	19
Alkalibacillus	14
Halobacillus	10
Gracilibacillus	1
Pseudalkalibacillus	1
Staphylococcaceae	Staphylococcus	34
Planococcaceae	Planococcus	2
Actinomycetota	Actinomycetes	Micrococcales	Micrococcaceae	Kocuria	2
Balneolota	Balneolia	Balneolales	Balneolaceae	Fodinibius	1

Strain No.	Phylogenetically related strain	16S rRNA gene similarity (%)
DCBG3011	Bacillus tequilensis strain ZL4	98.56
DCBB4011	Alkalibacillus halophilus strain ESP2_3	98.55
DCBR2051	Bradyrhizobium guangxiense strain CCBAU 53363	98.44
DCBO6112	Salicola marasensis strain 5Ma3	97.13
DCBT1121	Halospina denitrificans strain HGD 1-3	98.25
DCBB3011	Halomonas qaidamensis strain XH36	97.62
DCBB3001	Virgibacillus salarius strain VS-33	97.60
DCBT4032	Bacillus haynesii strain INH14A	97.70
DCBS4004	Staphylococcus cohnii strain S10	96.68
DCBT4043	Bacillus altitudinis strain NS7	96.60
DCBB4101	Aliifodinibius salipaludis strain WN023	95.21

Strain No.	Phylogenetically related strain	16S rRNA gene similarity (%)
DCBG3011	Bacillus tequilensis strain ZL4	98.56
DCBB4011	Alkalibacillus halophilus strain ESP2_3	98.55
DCBR2051	Bradyrhizobium guangxiense strain CCBAU 53363	98.44
DCBO6112	Salicola marasensis strain 5Ma3	97.13
DCBT1121	Halospina denitrificans strain HGD 1-3	98.25
DCBB3011	Halomonas qaidamensis strain XH36	97.62
DCBB3001	Virgibacillus salarius strain VS-33	97.60
DCBT4032	Bacillus haynesii strain INH14A	97.70
DCBS4004	Staphylococcus cohnii strain S10	96.68
DCBT4043	Bacillus altitudinis strain NS7	96.60
DCBB4101	Aliifodinibius salipaludis strain WN023	95.21

Genus	Strain No.	Enzyme activity
Halomonas	DCBB3011	－	－	－	－	＋	－	－
DCBB2002	－	－	－	＋	＋	＋	＋
DCSR3011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBR2011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	－
Bacillus	DCBT4032	－	－	＋	－	＋	＋	＋
DCBT4043	－	－	－	＋	－	＋	＋
DCBR2021	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBT1021	＋	＋	－	＋	＋	＋	＋
DCSR2052	－	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCSR3003	－	－	＋	＋	＋	＋	－
DCSR3041	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBS1032	＋	－	－	－	＋	＋	＋
DCBG3011	－	＋	－	＋	＋	＋	＋
Virgibacillus	DCBB3001	－	－	－	－	＋	－	＋
DCBT1022	－	＋	－	＋	＋	－	＋
DCBS3011	－	－	－	－	－	－	－
DCBE0001	＋	＋	－	＋	＋	－	－
DCSE7001	＋	－	－	＋	＋	－	－
DCBR1021	－	－	＋	－	＋	－	＋
Bradyrhizobium	DCBR2051	＋	＋	＋	－	＋	＋	＋
DCBR2041	＋	－	＋	＋	＋	＋	＋
DCBR2052	－	－	＋	－	－	＋	＋
Vreelandella	DCBB1003	＋	－	＋	＋	＋	－	－
Staphylococcus	DCBS4004	－	－	＋	＋	＋	＋	＋
DCBO2003	－	－	－	－	＋	＋	－
DCBR1011	－	－	－	＋	＋	－	＋
DCBO1001	＋	＋	－	－	－	－	＋
Oceanobacillus	DCBB1023	－	－	－	－	－	－	－
Idiomarina	DCBB2023	－	－	－	＋	＋	＋	＋
Alkalibacillus	DCBT1111	＋	－	－	－	＋	－	＋
DCBG2041	－	－	－	－	－	－	－
DCBO3001	＋	－	－	－	＋	＋	＋
DCBB4011	－	－	＋	－	－	－	－
Halobacillus	DCBB4051	－	＋	－	＋	－	－	－
Halovibrio	DCSR3002	＋	－	＋	＋	－	＋	＋
Pseudomonas	DCSE7001	＋	－	－	＋	＋	＋	－
DCBA1001	－	－	＋	＋	＋	－	＋
Planococcus	DCSB2004	＋	－	－	－	－	－	－
DCBG2012	－	－	－	－	－	－	－
Marinobacter	DCSB3002	＋	－	＋	＋	＋	＋	－
Kocuria	DCBR3041	－	＋	＋	－	－	＋	＋
DCSE5121	－	－	－	－	＋	＋	＋
Gracilibacillus	DCBS4002	－	＋	－	－	－	－	－
Pseudalkalibacillus	DCBG5001	－	－	－	－	－	－	－
Fodinibius	DCBB4101	－	－	－	＋	－	－	－

Genus	Strain No.	Enzyme activity
Halomonas	DCBB3011	－	－	－	－	＋	－	－
DCBB2002	－	－	－	＋	＋	＋	＋
DCSR3011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBR2011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	－
Bacillus	DCBT4032	－	－	＋	－	＋	＋	＋
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DCSR3003	－	－	＋	＋	＋	＋	－
DCSR3041	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
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DCBG3011	－	＋	－	＋	＋	＋	＋
Virgibacillus	DCBB3001	－	－	－	－	＋	－	＋
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DCBS3011	－	－	－	－	－	－	－
DCBE0001	＋	＋	－	＋	＋	－	－
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Oceanobacillus	DCBB1023	－	－	－	－	－	－	－
Idiomarina	DCBB2023	－	－	－	＋	＋	＋	＋
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Halovibrio	DCSR3002	＋	－	＋	＋	－	＋	＋
Pseudomonas	DCSE7001	＋	－	－	＋	＋	＋	－
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Marinobacter	DCSB3002	＋	－	＋	＋	＋	＋	－
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Pseudalkalibacillus	DCBG5001	－	－	－	－	－	－	－
Fodinibius	DCBB4101	－	－	－	＋	－	－	－

大柴旦盐湖嗜盐细菌多样性与功能酶挖掘

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许倩钰 , 王倩倩 , 吕佳萱 , 朱德锐 , 邢江娃 ^*

微生物学报 | 微生物资源多样性 2025,65(4): 1377-1395

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微生物学报 | 微生物资源多样性 2025, 65(4): 1377-1395

大柴旦盐湖嗜盐细菌多样性与功能酶挖掘

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许倩钰, 王倩倩, 吕佳萱, 朱德锐, 邢江娃^*

作者信息

青海大学医学院，基础医学研究中心，青海西宁

Diversity and functional enzymes of halophilic bacteria in the Da Qaidam Salt Lake

Qianyu XU, Qianqian WANG, Jiaxuan LÜ, Derui ZHU, Jiangwa XING^*

Affiliations

Research Center of Basic Medical Science, Medical College, Qinghai University, Xining, Qinghai, China

出版时间: 2025-04-04 doi: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240786

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摘要

收起

【目的】探究MgSO₄亚型大柴旦盐湖嗜盐细菌的多样性，比较不同培养条件对可培养嗜盐细菌多样性的影响，并对嗜盐细菌的胞外功能酶活性进行筛选。【方法】采用免培养Illumina MiSeq高通量测序平台分析大柴旦盐湖细菌的群落组成多样性；选取13种培养基、2个盐度、8组富集培养天数、6个稀释梯度分离嗜盐细菌，通过16S rRNA基因测序与BLAST序列比对确定菌株系统分类学地位。选取分属于18属的45株不同种的代表菌株，采用7种筛选培养基进行蛋白酶、纤维素酶、淀粉酶和酯酶4种功能酶活性的筛选。【结果】大柴旦盐湖免培养测序结果中共得到244个细菌操作分类单元(operational taxonomic unit, OTU)；获得明确分类地位的细菌有19门53纲92目133科153属，其中假单胞菌门(Pseudomonadota)和放线菌门(Actinomycetota)为主要的优势菌门。从大柴旦盐湖水泥样本中共分离出593株嗜盐细菌，分属于4门5纲8目12科22属，其中11株可能为潜在新种。Pseudomonadota和芽孢杆菌门(Bacillota)为可培养嗜盐细菌的优势菌门，盐单胞菌属(Halomonas)、枝芽孢菌属(Virgibacillus)和芽孢杆菌属(Bacillus)为主要的优势菌属。本研究比较了不同分离培养条件的分离效果。在10% NaCl浓度下分离得到的嗜盐细菌菌株数明显高于18% NaCl浓度，说明可培养嗜盐细菌中以中度嗜盐细菌居多；优势培养基为寡营养培养基2216E、1/2 R2A、1/10 2216E和1/10 TSA；最佳富集天数为7-30 d；不稀释的样本分离效果最好，其次为稀释梯度10^-1和10^-2。在45株代表菌株中，分别有40.0%、31.1%、40.0%和82.22%的菌株表现出蛋白酶、纤维素酶、淀粉酶和酯酶活性。大柴旦盐湖可培养嗜盐细菌的酯酶活性检出率较高，而纤维素酶活性检出率相对较低。【结论】优化分离培养方法可显著提升盐湖可培养嗜盐细菌的多样性。大柴旦盐湖水泥样本中嗜盐细菌多样性较丰富，且具有较高的嗜盐酶活性，为后续进一步研究嗜盐细菌的应用提供了依据。

关键词

大柴旦盐湖 / 嗜盐细菌 / 生物多样性 / 分离培养 / 高通量测序 / 功能酶

Abstract

收起

[Objective] To explore the diversity of halophilic bacteria in the magnesium sulfate-subtype Da Qaidam Salt Lake, compare the effects of different culture conditions on the diversity of halophilic bacteria, and screen the extracellular functional enzymes of halophilic bacteria. [Methods] Illumina MiSeq was used to analyze the diversity of bacteria in the Da Qaidam Salt Lake. Thirteen media, 2 salinities, 8 enrichment culture periods, and 6 dilution gradients were selected to isolate halophilic bacteria, and the taxonomic status of the strains was determined by 16S rRNA gene sequencing and BLAST sequence alignment. According to the sequencing results, 45 representative strains of different species belonging to 18 genera were selected and 7 media were used to screen the strains with activities of functional enzymes including protease, cellulase, amylase, and esterase. [Results] A total of 244 bacterial OTUs were obtained by culture-free high-throughput sequencing in the Da Qaidam Salt Lake. The strains with clear taxonomic status were annotated to 153 genera, 133 families, 92 orders, 53 classes of 19 phyla, with Pseudomonadota and Actinomycetota being the dominant phyla. A total of 593 strains of halophilic bacteria were isolated from the mixed water and mud samples of the Da Qaidam Salt Lake, belonging to 22 genera, 12 families, 8 orders, 5 classes of 4 phyla, of which 11 strains may belong to potential new species. Pseudomonadota and Bacillota were the dominant phyla, and Halomonas, Virgibacillus, and Bacillus were the dominant genera. The number of halophilic bacteria isolated under the culture with 10% NaCl was significantly higher than that with 18% NaCl, indicating that moderately halophilic bacteria were dominant among culturable halophilic bacteria. The media with better isolation performance were 2216E, 1/2 R2A, 1/10 2216E, and 1/10 TSA, all of which are oligotrophic media. The optimal enrichment culture periods ranged from 7 to 30 days. The undiluted samples obtained the best isolation results, followed by dilution gradients of 10^-1 and 10^-2. Among the 45 representative strains, 40.0%, 31.1%, 40.0%, and 82.22% of the strains had activities of protease, cellulase, amylase, and esterase, respectively. [Conclusion] Optimization of the isolation and culture conditions can significantly improve the diversity of halophilic bacteria that can be cultured in salt lakes. The high diversity and high halophilic enzyme activities of the culturable halophilic bacteria from the Da Qaidam Salt Lake provide a basis for further application of these halophilic bacteria.

Key words

Da Qaidam Salt Lake / halophilic bacteria / biodiversity / isolation and culture / high-throughput sequencing / functional enzymes

引用本文

许倩钰, 王倩倩, 吕佳萱, 朱德锐, 邢江娃. 大柴旦盐湖嗜盐细菌多样性与功能酶挖掘. 微生物学报, 2025 , 65 (4) : 1377 -1395 . DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240786

Qianyu XU, Qianqian WANG, Jiaxuan LÜ, Derui ZHU, Jiangwa XING. Diversity and functional enzymes of halophilic bacteria in the Da Qaidam Salt Lake[J]. Acta Microbiologica Sinica, 2025 , 65 (4) : 1377 -1395 . DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240786

正文

收起

嗜盐微生物通常生长于盐湖、海洋、盐碱土壤等高盐环境中，在酶制剂研发、生物制药、高盐废水处理、食品加工、化妆品研发等领域均有较高的应用价值^[1-2]。嗜盐细菌属于典型的嗜盐微生物，具有丰富的物种和遗传多样性^[3]。其中，中度嗜盐细菌(生长盐度0.5-2.5 mol/L NaCl)和极端嗜盐细菌(生长盐度2.5-5.2 mol/L NaCl)是盐耐受性强的优势类群^[4]。它们具有独特的生理结构和代谢机制以适应高盐极端环境，并能产生多种耐高盐环境的生物活性物质，如各类水解酶^[5]。研究表明，从嗜盐细菌中提取的嗜盐水解酶不仅在工业中拥有广泛的潜在用途^[6-7]，还可用于医药^[8-9]、环境^[10]等领域。

盐湖是嗜盐细菌的重要栖息地之一。研究者们依托国内外各大盐湖开展了嗜盐细菌的相关研究。国外已研究的盐湖包括突尼斯的乔特杰里德湖、伊朗的梅根湖、美国的大盐湖城^[11]以及罗马尼亚的盐湖^[12]等。国内盐湖嗜盐细菌的研究则主要围绕新疆^[13]、青海^[14]、西藏^[15]、内蒙古^[16]和山西^[17]等地展开。大柴旦盐湖位于青海省柴达木盆地，湖面海拔高度为3 140-3 160 m，属于典型的MgSO₄亚型盐湖^[18]。湖水pH值近中性，以高Mg²⁺和高MgSO₄/MgCl₂比值为特征，总盐度为102.62-457.03 g/L，属于超盐极端环境^[19]。独特的地理位置和离子组分使大柴旦盐湖蕴含丰富的嗜盐细菌资源，其生物多样性和潜在应用价值亟待挖掘。

为探究大柴旦盐湖中嗜盐细菌的多样性，优化可培养嗜盐细菌的分离培养方案，本研究从大柴旦盐湖采集水泥混合样本，在2种盐度下进行不同天数的富集培养，并选用13种筛选培养基和6个稀释梯度进行稀释涂布和纯化，获得可培养嗜盐细菌的多样性；同时结合高通量测序方法获得的免培养细菌多样性进行比较分析。选取可培养嗜盐细菌的代表菌株进行各类嗜盐酶活性的筛选，获得具有明显嗜盐酶活性的菌株。本研究可获得大量大柴旦盐湖可培养嗜盐细菌资源用于后续的应用探索，并为挖掘各类嗜盐酶的下游应用奠定基础。

1 材料与方法

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1.1 材料

1.1.1 样品采集

2022年8月采集大柴旦盐湖的水泥混合样本，呈浑浊态，采样点海拔3 164 m，采样温度6.5 ℃，水样采集深度15 cm，3个采样点间隔大于100 m，分别命名为DCD1、DCD2和DCD3。样本采集后置于4 ℃车载冰箱，运回备用。大柴旦盐湖的地理坐标：95°02′-95°22′E，37°46′-37°55′N。

1.1.2 培养基

富集培养基：蛋白胨0.2 g，酵母浸出粉0.2 g，氯化铵1.0 g，硫酸镁0.2 g，乙酸钠2.0 g，丙酮酸钠1.25 g，乙二胺四乙酸1.0 g，2%磷酸二氢钾溶液10 mL，5%碳酸氢钠20 mL，陈海水1 L，pH 7.0。

分离培养基：富营养培养基采用富营养琼脂培养基(rich culture agar, RCA)^[20]、1/2 RCA培养基、胰蛋白胨大豆琼脂培养基(tryptic soy agar, TSA)^[21]、1/2 TSA培养基、Oesterhelt-Stoeckenius medium (OSM)^[22]、改良生长培养基(modified growth medium, MGM)和改良高氏1号培养基(modified Gao’s No. 1 medium, GS)；寡营养培养基采用瑞氏2A培养基(Reasoner’s 2A medium, R2A)^[23]、1/2 R2A培养基、海洋琼脂2216E培养基(Zobell marine agar 2216, 2216E)^[24]、1/10 2216E培养基、碱性寡营养培养基(alkaline oligotrophic medium, AOM)和1/10 TSA培养基。

产酶活性筛选培养基：以被筛选菌株原本使用的分离培养基作为对应的基础培养基。蛋白酶筛选培养基：加入质量分数为1%的脱脂牛奶；淀粉酶筛选培养基：加入质量分数为1%的可溶性淀粉，并准备卢卡氏碘液；纤维素酶筛选培养基：基础培养基，并准备质量分数为1%的刚果红溶液和1 mol/L NaCl溶液；酯酶筛选培养基：分别加入质量分数为1%的吐温-20、吐温-40、吐温-60和吐温-80。

以上培养基在制备时，氯化钠的添加量需根据具体需求进行调整，其质量浓度可为10%和18%。配制固体培养基时，需在保持原培养基成分不变的前提下，额外加入20 g/L琼脂粉。

1.1.3 主要试剂和仪器

细菌全基因提取试剂盒、离心柱型DNA提取试剂盒，天根生化科技(北京)有限公司；细菌通用引物、0.22 µm聚醚砜醋酸纤维膜，奥科生物科技有限公司；2×Easy Taq^®PCR SuperMix DNA marker，北京全式金生物技术(TransGen Biotech)有限公司；PCR仪，Bio-Rad公司；凝胶成像仪，Biosystems公司；电泳仪，北京六一生物科技有限公司。

1.2 高通量分析大柴旦盐湖微生物多样性

盐湖混合样品的总盐度和离子浓度测定采用离子色谱分析方法，参考《离子色谱分析方法通则JY/T 0575—2020》^[25]，由上海微谱化工技术服务有限公司检测完成。采用0.22 µm聚醚砜醋酸纤维膜对样品进行真空抽滤并裁切备用。参照细菌全基因组提取试剂盒说明提取基因组DNA，以V3-V4区域为靶标进行PCR扩增，引物为338F (5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′)和806R (5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′)。PCR扩增的反应体系及反应条件参照陶宇杰等^[15]的方法进行。采用荧光定量系统检测PCR产物，合格产物由上海美吉生物医药科技有限公司完成高通量测序。在97%相似性水平上，利用USEARCH v.11.0软件进行操作分类单元(operational taxonomic unit, OTU)聚类^[26]，并通过Silva数据库(https://www.arb-silva.de/)和RDP数据库(https://rdp.cme.msu.edu/)对OTUs进行注释和比对。在不同分类学水平上进行细菌群落组成分析，并利用Mothur软件进行稀疏性(rarefaction)分析和多样性指数计算^[27]。

1.3 富集培养和菌株分离

将混匀后的水泥样本分别接种至NaCl质量浓度为10%和18%的2组富集培养基中，接种量控制在40 mL/L，随后置于25 ℃恒温培养箱中富集培养，每12 h摇匀1次，以防样品沉淀。分别在第0、7、14、21、30、45、60和90天取样，稀释梯度分别为10⁰、10^-1、10^-2、10^-3、10^-4和10^-5。将稀释液振荡混匀后，分别从每个稀释梯度的稀释液中各取200 μL进行平板涂布，并置于25 ℃恒温培养箱中进行培养。其中，10% NaCl的固体培养基培养3-7 d后取出，18% NaCl的固体培养基培养7-14 d后取出。根据菌落的形态特征挑选单菌落，并重复至少2-3次划线培养进行纯化。对纯化后的菌株进行液体培养，培养条件为：25 ℃、90 r/min摇床培养48 h。培养后的纯化菌株进行甘油保种后，置于-80 ℃环境下保存。

1.4 细菌DNA的提取、PCR扩增与测序

菌株基因组DNA的提取按照DNA提取试剂盒说明书进行操作，利用通用引物27F (5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和1492R (5′-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3′)扩增细菌16S rRNA基因。PCR扩增的反应体系及反应条件参考马想蓉等^[28]的方法进行，经1%琼脂糖凝胶电泳检测后送至生工生物工程(上海)股份有限公司西安分公司进行测序。通过EzBioCloud数据库(https://www.ezbiocloud.net/)和NCBI BLAST数据库(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)将测序获得的16S rRNA基因序列进行相似性比对，明确菌株的系统分类学地位。

1.5 构建潜在新种的系统发育树

细菌的潜在新种是指与已知物种的16S rRNA基因相似性低于98.65%的菌种^[29]。从NCBI数据库下载与潜在新种菌株相似性最高的16S rRNA基因序列，并选取江华岛宗植菌(Zooshikella ganghwensis) DSM15267作为系统发育树的外群，利用MEGA v.11.0软件，采用邻接(neighbor joining, NJ)法构建系统发育树(bootstrap值为1 000)，分析大柴旦盐湖潜在新种菌株的系统发育地位。

1.6 数据处理

使用Excel软件进行数据统计，使用Adobe Illustrator 2024 v.28.0软件进行绘图。

1.7 嗜盐酶活性筛选

1.7.1 蛋白酶

将实验菌株以平板划线法接种于筛选培养基上，25 ℃恒温培养箱培养5-7 d。待长出明显菌落后，观察菌落周围是否有透明的蛋白水解圈产生。若有，则记录为蛋白酶阳性。

1.7.2 淀粉酶

将实验菌株以平板划线法接种于筛选培养基上，25 ℃恒温培养箱培养5-7 d。长出明显菌落后，用卢卡氏碘液铺满整个平板，直至完全覆盖生长出的菌落。此时淀粉酶筛选培养基遇碘变蓝，观察菌落周围是否有透明水解圈产生。若有，则记录为淀粉酶阳性。

1.7.3 纤维素酶

用点接法(三点接种)将实验菌株接种于筛选培养基上，25 ℃恒温培养箱培养5-7 d。长出明显菌落后，先将刚果红溶液倒入平板至全部没过菌落，静置40 min后再倒出；随后将1 mol/L NaCl溶液倒入平板，静置20 min后再倒出。此时观察菌落周围是否有透明水解圈产生。若有，则记录为纤维素酶阳性。

1.7.4 酯酶

将实验菌株以平板划线法分别接种于吐温-20、吐温-40、吐温-60和吐温-80筛选培养基上，25 ℃恒温培养箱培养5-7 d。长出明显菌落后，观察菌落周围是否有模糊状的酯酶水解圈产生。若有，则分别记录为吐温-20、吐温-40、吐温-60和吐温-80阳性。

1.8 NCBI数据提交

分离的可培养菌株的16S rRNA基因序列均已提交至NCBI数据库(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)，登录号为PQ680680-PQ681271。

2 结果与分析

收起

2.1 各样本细菌群落的α多样性

大柴旦盐湖水泥混合样本的总盐度为351.00 g/L，pH 6.97，Mg²⁺和SO₄^2-的浓度分别为16.25 g/L和27.34 g/L，属于MgSO₄亚型超盐盐湖。3个样本点共获得153 693条优化序列，平均长度427 bp。对各采样点水泥样本中的细菌群落结构进行了α多样性分析。结果显示(表1)，采样点DCD2的Sobs指数、Chao1指数和ACE指数均高于采样点DCD1和DCD3，表明DCD2有较优的细菌群落丰富度。Mothur软件的分析结果显示，各样本的稀释曲线随序列增加逐渐趋于平缓，且各采样点的覆盖率均≥99.99%，表明测序结果能够反映样本多样性的真实情况。

2.2 大柴旦盐湖免培养细菌多样性

在大柴旦盐湖样本进行的高通量测序与物种注释中，共有244个细菌OTUs，分属于19门53纲92目133科153属。

在门水平上(图1A)，优势菌门为假单胞菌门(Pseudomonadota)、放线菌门(Actinomycetota)、绿弯菌门(Chloroflexota)、芽单胞菌门(Gemmatimonadota)和拟杆菌门(Bacteroidota)，其平均丰度分别为31.4%、14.0%、8.7%、8.2%和7.1%。各采样点的第一优势菌门均为Pseudomonadota，第二优势菌门均为Actinomycetota。

在纲水平上(图1B)，优势菌纲为α-变形菌纲(Alphaproteobacteria)、γ-变形菌纲(Gammaproteobacteria)、放线菌纲(Actinomycetes)、绿弯菌纲(Chloroflexia)和长微菌纲(Longimicrobiia)，其平均丰度分别为14.3%、13.1%、6.4%、5.9%和5.4%。采样点DCD1的第一优势菌纲为Alphaproteobacteria，占比18.5%；采样点DCD2和DCD3的第一优势菌纲均为Gammaproteobacteria，占比分别为14.0%和12.1%。

在目水平上(图1C)，优势菌目为生丝微菌目(Hyphomicrobiales)、长微菌目(Longimicrobiales)、红细菌目(Rhodobacterales)、萨恰里单胞菌目(Saccharimonadales)和嗜几丁质菌目(Chitinophagales)，其平均丰度分别为6.7%、5.4%、4.3%、3.7%和3.1%。采样点DCD1和DCD2的第一优势菌目均为Hyphomicrobiales，占比分别为10.9%和6.1%；采样点DCD3的第一优势菌目为巴贝菌目(Babelales)，占比5.1%，该目在其他2个采样点的样本中均未被高通量测序检出。

在科水平上(图1D)，优势菌科为长微菌科(Longimicrobiaceae)、unclassified、副球菌科(Paracoccaceae)、硝化杆菌科(Nitrobacteraceae)和拜叶林克氏菌科(Beijerinckiaceae)，其平均丰度分别为5.4%、4.6%、4.3%、2.7%和2.3%。采样点DCD1的第一优势菌科为Longimicrobiaceae，占比8.7%；采样点DCD2的第一优势菌科为unclassified，占比5.3%；采样点DCD3的第一优势菌科为Paracoccaceae，占比4.0%。3个采样点的第一优势菌科均不同。

在属水平上(图1E)，优势菌属为unclassified、微红微球菌属(Rubellimicrobium)、慢生根瘤菌属(Bradyrhizobium)、红色杆菌属(Rubrobacter)和盐地杆菌属(Salinibacter)，其平均丰度分别为4.6%、2.8%、2.7%、2.2%和1.9%。采样点DCD1和DCD2的第一优势菌属均为unclassified，占比分别为6.5%和5.3%；采样点DCD3的丰度最高的优势菌属有3种，分别是Rubellimicrobium、Bradyrhizobium和鞘氨醇单胞菌(Sphingomonas)，丰度均为3.0%。

2.3 大柴旦盐湖可培养嗜盐细菌多样性

从大柴旦盐湖水样中共分离出593株嗜盐细菌，分属于4门5纲8目12科22属55种(表2)。

在门水平上，4门分别为Pseudomonadota (50.42%)、Bacillota (49.07%)、Actinomycetota (0.34%)和巴纽尔斯菌门(Balneolota，0.17%)。在纲水平上，优势菌纲为芽孢杆菌纲(Bacilli，49.07%)和Gammaproteobacteria (44.52%)。在目水平上，优势菌目(丰度>5.00%)为海洋螺菌目(Oceanospirillales，40.98%)、芽孢杆菌目(Bacillales，49.07%)和Hyphomicrobiales (5.90%)。在科水平上，优势菌科为盐单胞菌科(Halomonadaceae，40.81%)和芽孢杆菌科(Bacillaceae，43.00%)；次优势菌科(丰度>5.00%)为Nitrobacteraceae (5.90%)和葡萄球菌科(Staphylococcaceae，5.73%)。在属水平上，丰度大于5.00%的属有盐单胞菌属(Halomonas，33.90%)、枝芽孢菌属(Virgibacillus，18.21%)、芽孢杆菌属(Bacillus，17.20%)、Vreelandella (5.40%)、Bradyrhizobium (5.90%)和葡萄球菌属(Staphylococcus, 5.73%)，优势属为Halomonas、Virgibacillus和Bacillus (图2)。

2.4 不同分离条件对大柴旦盐湖可培养细菌多样性的影响

2.4.1 比较不同盐浓度的分离培养效果

大柴旦盐湖分离得到的嗜盐细菌中，18%盐度分离得到39株，占总菌数的6.58%，分属于4门4纲5目7科13属；10%盐浓度分离得到554株，占总菌数的93.42%，分属于3门4纲6目9科17属。10%盐度分离得到的菌株数量显著高于18%盐度，说明大柴旦盐湖中可培养的中度嗜盐细菌占绝大多数，而极端嗜盐细菌相对较少。

两个不同盐浓度下分离出的优势嗜盐菌属不同，但均为Halomonas属的菌株数量占比最大(图3)。对18% NaCl盐度下分离出的13个属的嗜盐细菌数量进行分类统计(图3A)，Halomonas占比30.77%，其次为喜盐芽孢杆菌属(Halobacillus，17.95%)、嗜碱芽孢杆菌属(Alkalibacillus，12.82%)、嗜盐弧菌属(Halovibrio，10.26%)、艾丁湖单胞菌属(Aidingimonas，5.13%)和Bacillus (5.13%)。在10% NaCl盐度条件下，Halomonas占比34.12%，其次为Virgibacillus (19.31%)、Bacillus (18.05%)、Bradyrhizobium (6.32%)、Staphylococcus (6.14%)和Vreelandella (5.78%) (图3B)。18% NaCl分离出了5个特有属，分别为螺旋杆菌属(Spiribacter)、卤水杆菌属(Salicola)、盐刺菌属(Halospina)、Aidingimonas和矿生菌属(Fodinibius)；10% NaCl分离出了9个特有属，分别为Vreelandella、海源菌属(Idiomarina)、Pseudomonas、海杆菌属(Marinobacter)、Bradyrhizobium、纤细芽孢杆菌属(Gracilibacillus)、假性嗜碱芽孢杆菌属(Pseudalkalibacillus)、Staphylococcus和游动球菌属(Planococcus)。

2.4.2 比较不同培养基的分离培养效果

比较11种细菌分离培养基(盐度10%和18%)及2种古菌分离培养基MGM和AOM (盐度18%)的分离培养效果(图4A)。富营养培养基中，RCA培养基共分离出3门4纲4目5科8属60株细菌，TSA培养基分离出2门2纲2目4科7属36株细菌，OSM培养基分离出2门2纲2目3科10属68株细菌，改良高氏1号培养基分离出2门2纲2目4科7属34株细菌，1/2 RCA培养基分离出2门3纲3目4科10属70株细菌，1/2 TSA培养基分离出2门3纲4目5科10属64株细菌，MGM培养基分离出2门2纲2目2科4属6株细菌。寡营养培养基中，R2A培养基共分离出3门3纲4目5科10属55株细菌，2216E培养基分离出2门2纲4目5科11属49株细菌，1/2 R2A培养基分离出2门2纲4目7科10属66株细菌，1/10 2216E培养基分离出3门4纲5目6科8属41株细菌，1/10 TSA培养基分离出2门2纲5目6科10属40株细菌，AOM培养基分离出2门2纲2目2科4属4株细菌。1/10 2216E和1/10 TSA培养基分离得到的可培养细菌在目水平的多样性最高；1/2 R2A培养基分离得到的可培养细菌在科水平的多样性最高；2216E培养基分离得到的可培养细菌在属水平的多样性最高，说明采用寡营养培养基能够有效提高可培养嗜盐细菌多样性。在属水平，11种细菌培养基均分离出Halomonas、Bacillus、Virgibacillus和Staphylococcus，这些属也为可培养结果中丰度大于5%的优势属。

除2216E和1/2 RCA培养基外，其余培养基均分离出了特有属(仅出现1次)或稀有属(仅出现2次)。特有属Salicola可从OSM培养基中分离；Fodinibius可从R2A培养基中分离；Marinobacter可从1/2 R2A培养基中分离；Halospina可从TSA培养基中分离；Gracilibacillus可从1/2 TSA培养基中分离；Spiribacter可从1/10 TSA培养基中分离；Pseudalkalibacillus可从改良高氏1号培养基中分离。稀有属考克氏菌属(Kocuria)可从1/10 2216E和RCA培养基中分离；Planococcus可从1/2 R2A和改良高氏1号培养基中分离；Aidingimonas可从MGM和AOM培养基中分离。

2.4.3 比较不同富集时间的分离效果

统计不同富集时间的细菌分离效果。结果显示，富集0 d (即不富集)共得到菌株64株，归类于2门2纲2目2科4属；富集7 d共得到菌株105株，归类于2门2纲3目5科10属；富集14 d共得到菌株144株，归类于2门3纲5目7科13属；富集21 d共得到菌株63株，归类于3门4纲6目7科10属；富集30 d共得到菌株83株，归类于3门3纲3目4科9属；富集45 d共得到菌株54株细菌，归类于3门3纲3目4科8属；富集60 d共得到菌株44株，归类于2门2纲2目3科9属；富集90 d共得到菌株36株，归类于2门2纲2目3科5属(图4B)。富集21 d的样本在目水平的多样性最高；富集14 d和21 d的样本在科水平的多样性最高；富集14 d的样本在属水平的多样性最高，其次是富集7 d和21 d。

除富集0 d和90 d外，其余富集时期均分离出了特有属或稀有属。第7天分离出的特有属为Halospina和Pseudomonas；第14天分离出的特有属为Aidingimonas、Planococcus和Spiribacter；第21天分离出的特有属为Marinobacter；第30天分离出的特有属为Gracilibacillus和Fodinibius；第45天分离出的特有属为Pseudalkalibacillus。稀有属Idiomarina可从第14天和第21天中分离；Kocuria可从第21天和第45天中分离；Salicola可从第30天和第60天中分离。

总体来看，富集7-30 d的分离效果最好。从0 d至90 d，不同富集天数分离菌株的数量和多样性随时间大致呈现正偏态分布；第0天和第90天分离出的菌株在属水平的多样性最低，且均未出现特有属(图4B)。

2.4.4 比较不同稀释梯度的分离效果

在不同稀释梯度的分离效果中，稀释梯度为10⁰的样本共分离出3门4纲6目9科17属112株细菌，稀释梯度为10^-1的样本分离出2门3纲4目6科14属113株细菌，稀释梯度为10^-2的样本分离出3门4纲7目9科14属109株细菌，稀释梯度为10^-3的样本分离出2门3纲4目5科11属98株细菌，稀释梯度为10^-4的样本分离出3门4纲5目6科10属81株细菌，稀释梯度为10^-5的样本分离出2门3纲5目6科10属80株嗜盐细菌(图4C)。

仅稀释梯度为10⁰、10^-1和10^-2时分离出了特有属。共4种特有属(Marinobacter、Pseudalkalibacillus、Fodinibius和Gracilibacillus)可从稀释梯度为10⁰的样本中分离；特有属Salicola可从稀释梯度为10^-1的样本中分离；特有属Halospina和Spiribacter可从稀释梯度为10^-2的样本中分离。不同稀释梯度的稀有属有4种，包括从10⁰和10^-1中分离的Halovibrio，从10^-2和10^-4中分离的Kocuria，从10⁰和10^-1中分离的Planococcus，以及从10^-1和10^-3中分离的Aidingimonas。除稀释梯度10^-5外，其余稀释梯度均分离出了稀有属。稀释梯度1的样本在目、科、属水平的多样性均为最高，且分离出的特有属最多。随着稀释梯度的增加，细菌多样性和菌株数均呈下降趋势。

2.5 大柴旦盐湖可培养嗜盐细菌中潜在的新种资源

从大柴旦盐湖水样中分离的嗜盐细菌中，有11株菌可能为潜在新种(与近缘菌株的16S rRNA基因相似度<98.65%) (表3)。系统发育分析结果表明(图5)，16S rRNA基因序列比对结果与建树结果基本一致，仅菌株DCBB4101未与比对时相似度较高的近缘菌株归类到同一进化分支。为明确这些潜在新种在系统发育学中的具体位置，后续需进行菌株多相分类学鉴定、全基因组测序和比较分析等工作。

2.6 大柴旦盐湖产嗜盐酶细菌筛选

从大柴旦盐湖分离的嗜盐细菌中，选取分属于18属45种的代表菌株进行蛋白酶、纤维素酶、淀粉酶、酯酶等4种胞外酶活性的检测。结果显示，45株被测菌株中，有40株至少具有1种胞外功能酶活性，酶活性菌株检出率为88.89%。具备被测酶活性的菌株分布于16个属，仅大洋芽孢杆菌属(Oceanobacillus)和Pseudalkalibacillus这2个属的菌株中未检测到被测功能酶活性。筛选出蛋白酶活性菌株18株，检出率为40.0%；纤维素酶活性菌株14株，检出率为31.1%；淀粉酶活性菌株18株，检出率为40.0%；对吐温-80有酯酶活性的菌株24株，检出率为53.3%；对吐温-60有酯酶活性的30株，检出率为66.7%；对吐温-40有酯酶活性的24株，检出率为53.3%；对吐温-20有酯酶活性的26株，检出率为57.8% (表4)。同时对4种吐温均有酯酶活性的菌株有11株，占比24.4%；至少对1种吐温有酯酶活性的菌株有37株，占比82.2%。大柴旦盐湖可培养嗜盐细菌的酯酶活性检出率最高，纤维素酶活性检出率最低。

从表4可以看出，同时具有蛋白酶、纤维素酶、淀粉酶和酯酶4种酶活性的菌株共有5株，占比11.11%，分属于Halomonas属(2株)、Bacillus属(2株)和Bradyrhizobium属(1株)，除Bacillus属外均为革兰氏阴性菌株。有9株菌同时具有3种酶活性，占比20.00%；有14株菌同时具有2种酶活性，占比31.11%；有12株菌仅检测出1种酶活性，占比26.67%。嗜盐细菌的胞外嗜盐酶活性呈现出多样性。

3 讨论

收起

3.1 大柴旦盐湖嗜盐细菌多样性

大柴旦盐湖是一个高盐盐湖，嗜盐古菌和嗜盐细菌资源均十分丰富。本研究基于高通量测序法从大柴旦盐湖中获得的免培养嗜盐细菌分类于19门53纲92目133科153属，基于不同分离培养方法获得的可培养嗜盐细菌分类于4门5纲8目12科22属。可培养嗜盐细菌所属的4个门均在免培养结果中被检测出，其中Pseudomonadota和Actinomycetota为免培养测序结果中的主要优势菌门。可培养和免培养结果中的共有细菌菌属包括Halomonas、Halospina、Idiomarina、Pseudomonas、Bradyrhizobium、Bacillus、Virgibacillus、Kocuria和Fodinibius，其中可培养结果中的优势菌属Bradyrhizobium也为免培养测序结果中的优势菌属，证明了本培养方案的有效性。

与其他盐湖分离培养的嗜盐细菌多样性结果对比，大柴旦盐湖水泥样本中分离获得的4种嗜盐细菌门类与马欣等^[30]从MgSO₄亚型盐湖尕斯库勒盐湖分离获得的细菌门类一致，且包含了在MgSO₄亚型达布逊盐湖^[31]中全部可培养细菌门类，说明MgSO₄亚型盐湖可培养嗜盐细菌在分类学水平为门时具有较高的一致性。在属水平上，大柴旦盐湖分离出的22属嗜盐细菌明显高于尕斯库勒盐湖中分离得到的13属，Halomonas、Halovibrio、Spiribacter、Bacillus、Virgibacillus、Halobacillus、Planococcus、Kocuria和Fodinibius为2个盐湖的共有属，且2个盐湖的可培养优势属均包括Bacillus和Halomonas。此外，张田田等^[22]从MgSO₄亚型盐湖茶卡盐湖中分离出的优势属为Bacillus和Halomonas，从MgSO₄亚型盐湖小柴旦盐湖中分离出的优势属为Halomonas，这些结果均与大柴旦盐湖的优势属相符。综上所述，不同MgSO₄亚型盐湖的可培养嗜盐细菌在门和属水平上均存在一定的相似性。Bacillus和Halomonas是MgSO₄亚型高盐盐湖中可培养嗜盐细菌的典型优势菌群。

田蕾等^[13]从新疆艾丁湖土样中分离出嗜盐细菌18个属，有7个属为与大柴旦盐湖的共有属，包括Kocuria、Bacillus、Gracilibacillus、Halobacillus、Virgibacillus、Marinobacter和Halomonas。其中，Kocuria属于嗜盐放线菌属。杨丹丹等^[32]在岱山盐场中分离出嗜盐细菌7个属，有5个属为与大柴旦盐湖的共有属，包括Halomonas、Pseudomonas、Marinobacter、Idiomarina和Halobacillus；优势属为Halomonas，占嗜盐细菌总数的46.8%，与本研究优势属一致。Guan等^[11]发现，目前已有的高盐盐湖生态系统中的细菌主要由16个属组成，包括Bacillus、需盐色盐杆菌属(Chromohalobacter)、Gracilibacillus、Halobacillus、嗜碱盐乳杆菌属(Halolactibacillus)、Halomonas、Halovibrio、Idiomarina、Oceanobacillus、鱼芽孢杆菌属(Piscibacillus)、Salicola、盐渍微菌属(Salimicrobium)、盐渍球菌属(Salinicoccus)、Staphylococcus、深海芽孢杆菌属(Thalassobacillus)和Virgibacillus。

3.2 嗜盐细菌分离培养方法

本研究中的优势培养基为2216E、1/2 R2A、1/10 2216E和1/10 TSA培养基，均为寡营养培养基，说明寡营养培养法可显著提升细菌的分离培养效果，与Pulschen等在南极洲的研究结果^[23]一致。富集培养法可通过富集未培养细菌的丰度、解除难培养嗜盐细菌的休眠状态^[33]等机制增加可培养嗜盐细菌的多样性。本研究结果显示，嗜盐细菌的最佳富集天数为7-30 d，富集天数过长并不能显著提升可培养嗜盐细菌的多样性。绝迹稀释法常被应用于环境微生物的分离培养^[34]。然而，本研究表明，过度稀释(稀释梯度≥10^-3)会显著降低可培养嗜盐细菌的菌株数量和多样性，稀释梯度10⁰、10^-1和10^-2的联合使用更适合嗜盐细菌的分离。这一发现与本课题组马欣、马想蓉等的前期研究结果^[28,30]相一致。与10% NaCl相比，18% NaCl条件下分离得到的嗜盐细菌数量较少，这不仅表明中度嗜盐细菌的数量大于极端嗜盐细菌的数量，也可能与极端嗜盐菌中嗜盐古菌的比例更高^[4,35]有关。此外，本研究设置的细菌培养温度为25 ℃，虽与大多数已有分菌研究的嗜盐微生物培养温度较为一致^[4,30,36-38]，但仍存在一定的局限性，可能会丢失一部分嗜低温的嗜盐细菌。

3.3 大柴旦盐湖嗜盐细菌产酶活性

本研究筛选出了一批具有产多种胞外嗜盐酶的嗜盐细菌，共分布于16个不同的属。其中，产淀粉酶菌株涉及11属，产蛋白酶菌株涉及11属，产纤维素酶菌株涉及8属，产酯酶菌株涉及14属。不同盐湖的理化特性不同，其分离菌株的胞外水解酶活性也存在差异^[39]。大柴旦盐湖属于MgSO₄亚型超盐盐湖，可培养嗜盐细菌的酯酶阳性率最高(82.2%)，其次为蛋白酶(40.0%)、淀粉酶(40.0%)和纤维素酶(31.1%)，其高酯酶活性检出率可能与Mg²⁺的激活作用有关^[40]。新疆艾丁湖属于Na₂SO₄亚型盐湖^[41]，其分离得到的中度嗜盐菌酯酶活性较好，阳性菌株占比72.7%；淀粉酶活性相对较差，占比22.7%^[13]。伊朗中部沙漠区Howz Soltan高盐盐湖的主要化学成分包括NaCl、KCl、MgSO₄、MgCl₂和Na₂SO₄，其分离出的280株嗜盐细菌中，分别有69.6%、63.2%、35.7%和24.3%的菌株具有脂肪酶、淀粉酶、蛋白酶和纤维素酶活性^[42]。其中，淀粉酶阳性率明显高于本研究结果，而蛋白酶和纤维素酶的阳性率较低，与本研究结果相似。进一步比较发现，Howz Soltan高盐盐湖和大柴旦盐湖具有胞外嗜盐酶活性的嗜盐细菌中，革兰氏阳性菌的菌株数量均明显高于革兰氏阴性菌，但在菌属多样性方面，大柴旦盐湖中的革兰氏阳性菌属和阴性菌属的数量基本一致。印度Marakkanam盐田中分离出8株嗜盐细菌，分属于Chromohalobacter、Halovibrio和Staphylococcus这3个属，均能产生脂肪酶和蛋白酶^[43]。智利北部阿塔卡马沙漠中分离出嗜盐细菌Halomonas和Idiomarina 2个属，其中大多数菌株具有1-2种胞外酶活性^[44]。以上研究表明，不同盐环境来源的嗜盐细菌在产酶活性方面既具有多样性，也存在一定的共性。

4 结论

收起

大柴旦盐湖水泥样本中嗜盐细菌的多样性较为丰富，且具有较高的嗜盐酶活性，在酶学应用方面具有很大的潜力，值得进一步研究。采用寡营养培养基、富集培养方法和适度样本稀释能显著增加可培养嗜盐细菌的多样性，可为后续盐湖嗜盐微生物的分离培养方法优化提供参考。

基金

收起

国家自然科学基金(32260019)
青海中央引导地方科技发展资金(2024ZY015)

参考文献

收起

文献

收起

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2025年第65卷第4期

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doi: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240786

接收时间：2024-12-05
首发时间：2026-02-06
出版时间：2025-04-04

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收稿日期：2024-12-05
录用日期：2025-01-24

基金

National Natural Science Foundation of China(32260019)

国家自然科学基金(32260019)

Qinghai Central Government Guide Local Science and Technology Development Fund(2024ZY015)

青海中央引导地方科技发展资金(2024ZY015)

作者信息

青海大学医学院，基础医学研究中心，青海西宁

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2种不同金属材料的力学参数

科 Family	属数 Number of genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)	属 Genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)
鹅膏菌科Amanitaceae	2	11	5.26	鹅膏菌属 Amanita	10	4.78
小菇科 Mycenaceae	2	12	5.74	丝盖伞属 Inocybe	5	2.39
多孔菌科 Polyporaceae	8	14	6.70	蜡蘑属 Laccaria	5	2.39
红菇科 Russulaceae	3	23	11.00	小皮伞属 Marasmius	6	2.87
				小菇属 Mycena	11	5.26
				光柄菇属 Pluteus	5	2.39
				红菇属 Russula	17	8.13
				栓菌属 Trametes	5	2.39

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TxT

Sample	Sobsindex	Chao1index	ACEindex	Shannonindex	Simpsonindex	Coverageindex (%)
DCD1	92	93.5	92.73	0.65	0.81	99.99
DCD2	114	114.0	114.16	0.64	0.83	99.99
DCD3	99	99.0	99.29	0.62	0.84	99.99

Sample

Sobsindex

Chao1index

ACEindex

Shannonindex

Simpsonindex

Coverageindex (%)

DCD1

93.5

92.73

0.65

0.81

99.99

DCD2

114

114.0

114.16

0.64

0.83

99.99

DCD3

99.0

99.29

0.62

0.84

99.99

Phylum	Class	Order	Family	Genus	Strain number
Pseudomonadota	Gammaproteobacteria	Oceanospirillales	Halomonadaceae	Halomonas	201
Vreelandella	32
Halovibrio	6
Aidingimonas	2
Salicola	1
Hahellaceae	Halospina	1
Alteromonadales	Idiomarinaceae	Idiomarina	15
Chromatiales	Ectothiorhodospiraceae	Spiribacter	1
Pseudomonadales	Pseudomonadaceae	Pseudomonas	4
Marinobacteracea	Marinobacter	1
Alphaproteobacteria	Hyphomicrobiales	Nitrobacteraceae	Bradyrhizobium	35
Bacillota	Bacilli	Bacillales	Bacillaceae	Bacillus	102
Virgibacillus	108
Oceanobacillus	19
Alkalibacillus	14
Halobacillus	10
Gracilibacillus	1
Pseudalkalibacillus	1
Staphylococcaceae	Staphylococcus	34
Planococcaceae	Planococcus	2
Actinomycetota	Actinomycetes	Micrococcales	Micrococcaceae	Kocuria	2
Balneolota	Balneolia	Balneolales	Balneolaceae	Fodinibius	1

Phylum

Class

Order

Family

Genus

Strain number

Pseudomonadota

Gammaproteobacteria

Oceanospirillales

Halomonadaceae

Halomonas

201

Vreelandella

Halovibrio

Aidingimonas

Salicola

Hahellaceae

Halospina

Alteromonadales

Idiomarinaceae

Idiomarina

Chromatiales

Ectothiorhodospiraceae

Spiribacter

Pseudomonadales

Pseudomonadaceae

Pseudomonas

Marinobacteracea

Marinobacter

Alphaproteobacteria

Hyphomicrobiales

Nitrobacteraceae

Bradyrhizobium

Bacillota

Bacilli

Bacillales

Bacillaceae

Bacillus

102

Virgibacillus

108

Oceanobacillus

Alkalibacillus

Halobacillus

Gracilibacillus

Pseudalkalibacillus

Staphylococcaceae

Staphylococcus

Planococcaceae

Planococcus

Actinomycetota

Actinomycetes

Micrococcales

Micrococcaceae

Kocuria

Balneolota

Balneolia

Balneolales

Balneolaceae

Fodinibius

Strain No.	Phylogenetically related strain	16S rRNA gene similarity (%)
DCBG3011	Bacillus tequilensis strain ZL4	98.56
DCBB4011	Alkalibacillus halophilus strain ESP2_3	98.55
DCBR2051	Bradyrhizobium guangxiense strain CCBAU 53363	98.44
DCBO6112	Salicola marasensis strain 5Ma3	97.13
DCBT1121	Halospina denitrificans strain HGD 1-3	98.25
DCBB3011	Halomonas qaidamensis strain XH36	97.62
DCBB3001	Virgibacillus salarius strain VS-33	97.60
DCBT4032	Bacillus haynesii strain INH14A	97.70
DCBS4004	Staphylococcus cohnii strain S10	96.68
DCBT4043	Bacillus altitudinis strain NS7	96.60
DCBB4101	Aliifodinibius salipaludis strain WN023	95.21

Strain No.

Phylogenetically related strain

16S rRNA gene similarity (%)

DCBG3011

Bacillus tequilensis strain ZL4

98.56

DCBB4011

Alkalibacillus halophilus strain ESP2_3

98.55

DCBR2051

Bradyrhizobium guangxiense strain CCBAU 53363

98.44

DCBO6112

Salicola marasensis strain 5Ma3

97.13

DCBT1121

Halospina denitrificans strain HGD 1-3

98.25

DCBB3011

Halomonas qaidamensis strain XH36

97.62

DCBB3001

Virgibacillus salarius strain VS-33

97.60

DCBT4032

Bacillus haynesii strain INH14A

97.70

DCBS4004

Staphylococcus cohnii strain S10

96.68

DCBT4043

Bacillus altitudinis strain NS7

96.60

DCBB4101

Aliifodinibius salipaludis strain WN023

95.21

Genus	Strain No.	Enzyme activity
Halomonas	DCBB3011	－	－	－	－	＋	－	－
DCBB2002	－	－	－	＋	＋	＋	＋
DCSR3011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBR2011	＋	＋	＋	＋	＋	＋	－
Bacillus	DCBT4032	－	－	＋	－	＋	＋	＋
DCBT4043	－	－	－	＋	－	＋	＋
DCBR2021	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBT1021	＋	＋	－	＋	＋	＋	＋
DCSR2052	－	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCSR3003	－	－	＋	＋	＋	＋	－
DCSR3041	＋	＋	＋	＋	＋	＋	＋
DCBS1032	＋	－	－	－	＋	＋	＋
DCBG3011	－	＋	－	＋	＋	＋	＋
Virgibacillus	DCBB3001	－	－	－	－	＋	－	＋
DCBT1022	－	＋	－	＋	＋	－	＋
DCBS3011	－	－	－	－	－	－	－
DCBE0001	＋	＋	－	＋	＋	－	－
DCSE7001	＋	－	－	＋	＋	－	－
DCBR1021	－	－	＋	－	＋	－	＋
Bradyrhizobium	DCBR2051	＋	＋	＋	－	＋	＋	＋
DCBR2041	＋	－	＋	＋	＋	＋	＋
DCBR2052	－	－	＋	－	－	＋	＋
Vreelandella	DCBB1003	＋	－	＋	＋	＋	－	－
Staphylococcus	DCBS4004	－	－	＋	＋	＋	＋	＋
DCBO2003	－	－	－	－	＋	＋	－
DCBR1011	－	－	－	＋	＋	－	＋
DCBO1001	＋	＋	－	－	－	－	＋
Oceanobacillus	DCBB1023	－	－	－	－	－	－	－
Idiomarina	DCBB2023	－	－	－	＋	＋	＋	＋
Alkalibacillus	DCBT1111	＋	－	－	－	＋	－	＋
DCBG2041	－	－	－	－	－	－	－
DCBO3001	＋	－	－	－	＋	＋	＋
DCBB4011	－	－	＋	－	－	－	－
Halobacillus	DCBB4051	－	＋	－	＋	－	－	－
Halovibrio	DCSR3002	＋	－	＋	＋	－	＋	＋
Pseudomonas	DCSE7001	＋	－	－	＋	＋	＋	－
DCBA1001	－	－	＋	＋	＋	－	＋
Planococcus	DCSB2004	＋	－	－	－	－	－	－
DCBG2012	－	－	－	－	－	－	－
Marinobacter	DCSB3002	＋	－	＋	＋	＋	＋	－
Kocuria	DCBR3041	－	＋	＋	－	－	＋	＋
DCSE5121	－	－	－	－	＋	＋	＋
Gracilibacillus	DCBS4002	－	＋	－	－	－	－	－
Pseudalkalibacillus	DCBG5001	－	－	－	－	－	－	－
Fodinibius	DCBB4101	－	－	－	＋	－	－	－

Genus

Strain No.

Enzyme activity

Protease

Cellulase

Amylase

Tween-80

Tween-60

Tween-40

Tween-20

Halomonas

DCBB3011

－

＋

－

DCBB2002

－

＋

DCSR3011

＋

DCBR2011

＋

－

Bacillus

DCBT4032

－

＋

－

＋

DCBT4043

－

＋

－

＋

DCBR2021

＋

DCBT1021

＋

－

＋

DCSR2052

－

＋

DCSR3003

－

＋

－

DCSR3041

＋

DCBS1032

＋

－

＋

DCBG3011

－

＋

－

＋

Virgibacillus

DCBB3001

－

＋

－

＋

DCBT1022

－

＋

－

＋

－

＋

DCBS3011

－

DCBE0001

＋

－

＋

－

DCSE7001

＋

－

＋

－

DCBR1021

－

＋

－

＋

－

＋

Bradyrhizobium

DCBR2051

＋

－

＋

DCBR2041

＋

－

＋

DCBR2052

－

＋

－

＋

Vreelandella

DCBB1003

＋

－

＋

－

Staphylococcus

DCBS4004

－

＋

DCBO2003

－

＋

－

DCBR1011

－

＋

－

＋

DCBO1001

＋

－

＋

Oceanobacillus

DCBB1023

－

Idiomarina

DCBB2023

－

＋

Alkalibacillus

DCBT1111

＋

－

＋

－

＋

DCBG2041

－

DCBO3001

＋

－

＋

DCBB4011

－

＋

－

Halobacillus

DCBB4051

－

＋

－

＋

－

Halovibrio

DCSR3002

＋

－

＋

－

＋

Pseudomonas

DCSE7001

＋

－

＋

－

DCBA1001

－

＋

－

＋

Planococcus

DCSB2004

＋

－

DCBG2012

－

Marinobacter

DCSB3002

＋

－

＋

－

Kocuria

DCBR3041

－

＋

－

＋

DCSE5121

－

＋

Gracilibacillus

DCBS4002

－

＋

－

Pseudalkalibacillus

DCBG5001

－

Fodinibius

DCBB4101

－

＋

－