微生物学报

环境对蝗虫微孢子虫孢子能量代谢和应激反应的影响

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郭玮琦 ¹^,² , 康晗晔 ¹^,² , 霍帆 ¹^,² , 张航悦 ¹^,² , 张娜 ¹^,² , 季荣 ¹^,² , 扈鸿霞 ¹^,²

微生物学报 | 研究报告 2025,65(5): 2229-2239

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微生物学报 | 研究报告 2025, 65(5): 2229-2239

环境对蝗虫微孢子虫孢子能量代谢和应激反应的影响

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郭玮琦¹^,², 康晗晔¹^,², 霍帆¹^,², 张航悦¹^,², 张娜¹^,², 季荣¹^,², 扈鸿霞¹^,²

作者信息

^1.新疆师范大学生命科学学院，中亚区域跨境有害生物联合控制国际研究中心，新疆特殊环境物种多样性应用与调控重点实验室，新疆乌鲁木齐

^2.塔城昆虫迁飞生物学新疆野外科学观测研究站，新疆塔城

Effects of environment conditions on spore energy metabolism and stress responses of Paranosema locustae

Weiqi GUO¹^,², Hanye KANG¹^,², Fan HUO¹^,², Hangyue ZHANG¹^,², Na ZHANG¹^,², Rong JI¹^,², Hongxia HU¹^,²

Affiliations

^1.Xinjiang Key Laboratory of Special Species Conservation and Regulatory Biology, International Research Center of Cross-border Pest Management in Central Asia, School of Life Sciences, Xinjiang Normal University, Urumqi, Xinjiang, China

^2.Tacheng Insect Migratory Biology Observation and Research Station of Xinjiang, Tacheng, Xinjiang, China

出版时间: 2025-05-04 doi: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240804

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摘要

收起

蝗虫微孢子虫(Paranosema locustae)作为一种环境友好的生物防治剂，在蝗虫生物防治中具有广阔的应用潜力。然而，在实际应用中，其效果会受到多种环境因素的影响。因此了解蝗虫微孢子虫对不同环境的抗性差异，对其在生物防治中的应用至关重要。【目的】探究不同环境条件对蝗虫微孢子虫能量代谢和应激反应，为蝗虫微孢子虫的环境适应性提供理论基础。【方法】将蝗虫微孢子虫孢子制剂暴露于3种可控的实验环境中，分别是40 °C干燥环境、20 °C水环境以及干燥条件下紫外线(≥100 µW/cm²)辐照不同时间。通过酶标仪、激光共聚焦显微镜和相差显微镜，分别测定处理后的蝗虫微孢子虫感染蝗虫的生存曲线、孢子发芽率、ATP含量、蛋白量、活性氧(active oxygen, ROS)水平以及海藻糖含量。【结果】在20 °C水环境中处理后，蝗虫微孢子虫的发芽率降低，感染蝗虫的中位生存时间延长；同时，其ATP和ROS水平显著上升。在40 °C干燥环境下，孢子的ATP浓度和ROS水平无显著变化，发芽率以及感染蝗虫的生存曲线与对照组相比也无显著差异。此外，在高强度紫外线照射(≥100 µW/cm²)下，蝗虫微孢子虫的ATP浓度也显著上升，ROS反应增强，但发芽率以及感染蝗虫的生存曲线未出现显著变化。【结论】干燥状态的蝗虫微孢子虫对环境具有更强的抗性，而长时间处于液体环境中会导致孢子活力降低甚至丧失。这些结果为蝗虫微孢子虫生物治蝗制剂的保存方法和应用提供了思路，并为其环境适应性研究提供了理论基础。

关键词

蝗虫微孢子虫 / 环境适应性 / ATP / ROS / 海藻糖

Abstract

收起

Paranosema locustae, an environmentally friendly biocontrol agent, holds significant potential for managing locusts. However, its application is affected by various environmental factors. Understanding the resistance differences of P. locustae under different conditions is essential for its application in biocontrol. [Objective] To study the effects of different environmental conditions on the energy metabolism and stress responses of P. locustae, providing a theoretical foundation for its environmental adaptability. [Methods] Spores of P. locustae were exposed to three controlled experimental environments: a dry environment at 40 °C (40 °C GR), a wet environment at 20 °C (20 °C SR), and ultraviolet irradiation under dry conditions (≥100 µW/cm²) (ZW) for varying time periods. We employed a microplate reader, laser confocal microscopy, and differential interference contrast microscopy to assess the survival curves of infected locusts and the spore germination rate, ATP level, protein content, reactive oxygen species (ROS) level, and trehalose level of P. locustae. [Results] In the 20 °C SR group, P. locustae showed a decrease in the germination rate and notable rises in ATP and active oxygen (ROS) levels, and the median survival time of infected locusts increased. The 40 °C GR group showed no significant changes in the ATP level, ROS level, spore germination rate, or the survival curve of infected locusts compared with the control group. The ZW group showed increases in the ATP and ROS levels, but no significant change in the germination rate or the survival curve of infected locusts. Conclusions Dry spores of P. locustae exhibit greater resistance to environmental stress, while prolonged exposure to liquid conditions leads to a decrease or even loss of spore viability. These findings provide insights for the preservation and application of P. locustae formulations, establishing a theoretical basis for revealing its environmental adaptability.

Key words

Paranosema locustae / environmental adaptability / ATP / ROS / trehalose

引用本文

郭玮琦, 康晗晔, 霍帆, 张航悦, 张娜, 季荣, 扈鸿霞. 环境对蝗虫微孢子虫孢子能量代谢和应激反应的影响. 微生物学报, 2025 , 65 (5) : 2229 -2239 . DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240804

Weiqi GUO, Hanye KANG, Fan HUO, Hangyue ZHANG, Na ZHANG, Rong JI, Hongxia HU. Effects of environment conditions on spore energy metabolism and stress responses of Paranosema locustae[J]. Acta Microbiologica Sinica, 2025 , 65 (5) : 2229 -2239 . DOI: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240804

正文

收起

微孢子虫作为真菌界细胞内寄生病原体，能够感染大部分无脊椎动物和脊椎动物^[1-3]。其基因组的压缩导致微孢子虫严重依赖宿主细胞资源^[4-5]。蝗虫微孢子虫(Paranosema locustae)专性寄生于蝗虫，是最早开发和登记的蝗虫防治微生物制剂，也是目前唯一开发用于害虫防治的微孢子虫，田间应用广泛^[6-7]。在环境阶段，微孢子虫具有一个保护性结构——孢子壁，由 3层结构组成，由外到内依次为孢子外壁(exospore)、孢子内壁(endospore)和原生质膜(plasma membrane)^[8]。孢子外壁由致密的淀粉纤维状蛋白质基质构成，表面均匀但不光滑，有突起，为微孢子虫提供了物理抗压能力，以抵御外界环境胁迫^[9]。微孢子虫寄生的第一步是发芽，在合适的环境刺激下，孢子极管外翻^[10]。极管的吐出以及孢子内容物的运输发生在极短时间内，仅需1.6 s^[11]，最终侵染性的孢质团被转运到宿主细胞中，完成寄生过程^[12]。孢子发芽后，随着核心区域的再水化，其相态由亮转变为暗，悬浮液散射行为的改变导致孢子萌发期间光密度(optical density, OD)的损失^[13-14]。因此，通过测定OD₆₃₀的吸收值，可以反映微孢子虫的发芽情况。

在细菌芽孢中，ATP会激发芽孢萌发，母细胞中ATP的产生会影响子芽孢的ATP库^[15]。活性氧(reactive oxygen species, ROS)是呼吸作用的副产品，与功能障碍和疾病广泛相关，是疾病期间积累的功能失调线粒体的产物，各种应激因素会导致生物体内的ROS积累^[16-17]。在环境阶段，微孢子虫无法获得能量，为了应对外界刺激，只能通过消耗自身能量物质来合成ATP以应对应激反应，最常用的能源物质就是海藻糖。海藻糖存在于多种生物体中，发挥着多种生物学功能，如渗透保护和作为毒力因子等。在热、冷、氧化、干燥等环境压力下，海藻糖被合成为应激反应因子，而在真菌孢子中，它可以作为能量和碳的来源，在发芽过程中迅速消耗^[18-20]。此外，在急性营养应激条件下，蛋白质也可以作为能量来源，细胞通过蛋白酶体和自噬系统，利用翻译抑制和降解机制来响应营养应激并重组^[21]。

蝗虫微孢子虫生长和繁殖的适宜温度在20-35 °C范围内，但孢子制剂的存放条件一般是在-20 °C至-10 °C环境下冷冻保存。应用时，需先将孢子母液化冻，并添加助剂配制成微孢子虫制剂使用，由于蝗虫防治时期多在夏季，孢子制剂运输到野外需要经过长时间的常温液体环境保存，这制约了其远距离运输和大面积推广应用^[22]。微孢子虫经消化道感染寄主^[23]，洒到田间后如果不能快速被宿主摄食，还需要面临野外干燥、高温和紫外等环境。一般情况下，生物体面对热、紫外线辐射和干燥条件会出现显著的应激反应，而长时间的应激可能会导致生物死亡。然而，关于外界环境因子是否会影响蝗虫微孢子虫的杀虫效果，目前尚未见研究报道。本研究将蝗虫微孢子虫暴露在3种可控的实验环境中：20 °C水环境(20 °C SR)、40 °C干燥环境(40 °C GR)、辐照强度≥100 μW/cm²的紫外照射(ZW)，分别模拟运输环境、野外高温和紫外照射环境。检测蝗虫微孢子虫在不同环境条件下孢子发芽率、感染蝗虫后的孢子毒力和感染力、ATP含量、蛋白量、ROS水平以及海藻糖含量。旨在了解环境孢子阶段蝗虫微孢子虫的环境适应性，找到蝗虫微孢子虫的最佳存储和应用环境，为其推广应用提供科学依据。

1 材料与方法

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1.1 蝗虫微孢子虫的处理

蝗虫微孢子虫由中国农业大学植物保护学院提供，经冷链运输至实验室。使用6层医用纱布过滤，去除大部分蝗虫组织等杂质，经血细胞计数后，将孢子稀释至1×10⁹孢子/mL，并分装至1.5 mL离心管中，于-20 °C保存备用。

取1 mL孢子悬浮液(1×10⁹孢子/mL)用蒸馏水洗涤3次。对于20 °C水环境处理，将孢子悬浮液置于20 °C的金属浴中，分别处理5、10和15 d。对于40 °C干燥环境处理，将孢子悬浮液移至滤纸上，室温风干后，置于底部含硅胶干燥剂的1.5 mL离心管中(相对湿度≤30%)，并在40 °C的金属浴中处理5、10和15 d。对于紫外环境处理，将孢子悬浮液转移到6 cm培养皿中，使用2个波长为253.7 nm的15 W紫外灯(江苏巨光光电科技有限公司)放置在孢子上方30 cm处，以≥100 µW/cm²的强度垂直照射(不盖培养皿，相对湿度≤30%)，室温下照射8、16和24 h。设置阳性对照为-20 °C冷冻保存的蝗虫微孢子虫悬液，阴性对照为将蝗虫微孢子虫置于100 °C沸水中处理10 min。-20 °C冷冻保存的蝗虫微孢子虫悬液(CK)；100 °C沸水处理10 min (100 °C 10 min)；20 °C水环境处理5 d (20 °C SR 5 d)；20 °C水环境处理10 d (20 °C SR 10 d)；20 °C水环境处理15 d (20 °C SR 15 d)；40 °C干燥环境处理5 d (40 °C GR 5 d)；40 °C干燥环境处理10 d (40 °C GR 10 d)；40 °C干燥环境处理15 d (40 °C GR 15 d)；紫外光持续照射8 h (ZW 8 h)；紫外光持续照射16 h (ZW 16 h)；紫外光持续照射24 h (ZW 24 h)。

1.2 孢子发芽率检测

将蝗虫微孢子虫悬浮液稀释至浓度为10⁸孢子/mL，5 000 r/min离心1 min，弃去上清液。加入1 mL 0.25 mol/L NaHCO₃-Na₂CO₃溶液，充分混匀后，在28 °C金属浴中放置2 h，使孢子充分发芽。发芽结束后5 000 r/min离心1 min，弃去上清液，加入1 mL蒸馏水。使用Infinite M200 PRO全波长酶标仪(Tecan上海贸易有限公司)在OD₆₃₀处测定吸光度^[13,24]。同时检测发芽孢子和未发芽孢子的OD₆₃₀吸光度，每组进行3次生物学重复，每个样本进行3次技术重复，同一稀释浓度下，发芽率计算如公式(1)所示。

(1)$发芽率 =\left[\left(\right.\right. 发芽起始液 \left.O D_{630}\right)-( 发芽终止液 \left.\left.O D_{630}\right)\right] / 发芽起始液 O D_{630} \times 100 \% $

1.3 蝗虫的饲养和感染后的生存试验

本研究使用的模式生物为东亚飞蝗(Locusta migratoria manilensis)，在温度为(30±2) °C、相对湿度为(50±5)%、明暗周期为14:10的恒温箱中孵化。孵化后的蝗虫在温度(30±2) °C、相对湿度(50±5)%、恒定光照的昆虫培养室内饲养，饲喂新鲜水培小麦。当蝗虫达到三龄期时，进行蝗虫微孢子虫感染。用血细胞计数板计数，将孢子稀释至浓度为1×10⁸孢子/mL。接种前饥饿12-24 h时，使用移液器喂入5 µL孢子悬液，每只蝗虫接受5×10⁵孢子的感染剂量^[25]。设置阳性对照组为-20 °C保存的蝗虫微孢子虫感染的蝗虫；阴性对照组为未感染微孢子虫的蝗虫。生存实验中，每个感染实验组包含50只蝗虫。每天记录并移除死亡的蝗虫(排除非自然死亡)。

1.4 ATP和蛋白浓度检测

通过ATP浓度与蛋白浓度的比值来表示不同处理下蝗虫微孢子虫的ATP浓度。使用增强型ATP检测试剂盒(上海碧云天生物技术股份有限公司)，按照试剂盒提供的方法绘制标准曲线。取1×10⁹孢子/mL的孢子悬浮，沉淀后加入1 mL裂解液，加入研磨珠，使用JXFSTPRP-24全自动样品研磨仪(上海净信实业发展有限公司)，以70 Hz的频率研磨1 min，间隔5 s，研磨5次。在4 °C、12 000×g离心5 min，取上清液。在96孔板中加入100 µL ATP检测工作液，室温放置3-5 min以清除本底ATP。加入20 μL样品并混匀，使用Infinite M200 PRO全波长酶标仪进行化学发光检测(luminometer)。根据ATP检测标准曲线(y=56.636x+80.12；R²=0.997 6)确定样本ATP含量。

使用BCA蛋白浓度检测试剂盒(上海碧云天生物技术股份有限公司)，按试剂盒提供的方法绘制标准曲线。取20 μL待测样品，每个孔中加入200 μL的BCA工作液，在37 °C下放置 20 min。使用Infinite M200 PRO全波长酶标仪在波长OD₅₆₂下进行检测，并根据标准曲线(y=0.7212x+0.1504；R²=0.992 2)确定蛋白浓度。

1.5 活性氧(ROS)检测

使用无血清昆虫细胞培养基将探针DCFE-DA稀释至1:1 000。对照组取未处理的微孢子虫，将探针装载于细胞内，37 °C下孵育20 min后，去除DCFE-DA，使用无血清培养液洗涤孢子3次，然后在荧光显微镜下检测。实验组为环境因子刺激后的细胞，装载探针后在37 °C下孵育20 min，去除DCFE-DA后，用无血清培养液洗涤细胞3次。在相同的激光强度下，使用激光共聚焦显微镜(徕卡仪器有限公司)观察。使用ImageJ win64软件处理荧光信号强度，并根据荧光信号强度数据化微孢子虫体内的ROS水平。

1.6 海藻糖含量检测

使用海藻糖检测试剂盒(北京索莱宝科技有限公司)，根据海藻糖标准品绘制标准曲线。将处理好的微孢子虫(1×10⁹个孢子)加入1 mL海藻糖提取液，加入研磨珠后，在全自动样品研磨仪(上海净信实业发展有限公司)中，以70 Hz的频率研磨1 min，间隔5 s，研磨5次。室温静置45 min，振荡3-5次，冷却后 8 000×g常温离心10 min，取上清液。取60 μL样本和240 μL现配的工作液，混匀后在95 °C下水浴10 min，自然冷却至室温后，取200 μL至96孔板中，使用Infinite M200 PRO全波长酶标仪在波长OD₆₂₀下检测。根据标准曲线(y=3.777 4x+0.086 2；R²=0.995 3)，按照1×10⁸个孢子计算微孢子虫的海藻糖含量，如公式(2)所示。

(2)$\begin{array}{l}\text { 海藻糖含量 }\left(\mu \mathrm{g} / 10^{8} \text { 孢子 }\right)=1000 \times V_{1} \times x \div\\\left(10 \times V_{1} \div V_{2}\right)=100 x\end{array}$

式中：V₁为反应体系中的样本体积，0.06 mL；V₂为提取液总体积，1 mL；10为孢子总数，10亿；1 000为单位换算系数。

1.7 数据分析

所有数据及统计检验均采用GraphPad Prism 8.0.2软件处理。数据采用单因素方差分析或非配对t检验进行分析，并采用Dunnett多重比较检验将实验组与对照组进行比较。所有标准曲线使用Excel制作[原始数据存储在国家微生物科学数据中心(http://nmdc.cn)，编号为NMDCX0002081]。生存曲线采用GraphPad Prism 8进行数据分析和绘制，P值采用Mantel-Cox检验计算。P值的显著性水平用星号表示，*P<0.05，**P<0.01，***P<0.001和****P<0.000 1；ns表示不显著(P≥0.05)。

2 结果与分析

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2.1 不同环境条件下蝗虫微孢子虫的发芽率

与阳性对照组相比，紫外和干燥条件均未导致孢子发芽率降低(图1A、1C)。然而，在20 °C水环境中处理的孢子发芽率显著下降，处理15 d后，其发芽率与阴性对照组相比无显著差异(图1B)。发芽处理后，大部分孢子内容物并未释放，仍保持明亮状态(图1C)。

2.2 不同环境条件处理蝗虫微孢子虫后感染东亚飞蝗的生存曲线

在20 °C水环境中处理的蝗虫微孢子虫对蝗虫的毒力显著下降，尤其是处理15 d后，感染蝗虫的中位生存时间达到42.5 d，与未感染蝗虫的生存曲线无显著差异，而阳性对照组的中位生存时间为19 d (图2A)。相比之下，40 °C干燥环境处理的蝗虫微孢子虫感染蝗虫后的生存曲线并与阳性对照组相比无显著差异(图2B)。紫外处理组感染蝗虫的生存曲线与阳性对照组相比同样无显著变化(图2C)。

2.3 环境刺激对孢子ATP和蛋白浓度的影响

ATP水平的变化是孢子阶段对环境变化的一种响应。在40 °C干燥条件下，孢子ATP浓度与对照组相比无显著变化。相比之下，在20 °C水环境处理后，蝗虫微孢子虫的ATP浓度显著上升(图3A)。此外，在水环境和紫外环境处理下，蝗虫微孢子虫的蛋白质含量显著下降(图3B)。

2.4 不同环境下蝗虫微孢子虫体内ROS水平的变化

与ATP的产生类似，ROS作为呼吸作用的副产物也会随之产生。在水环境和紫外照射下，蝗虫微孢子虫孢子体内的ROS水平上升，而在干燥环境下蝗虫微孢子虫孢子的ROS水平与阳性对照组相比无显著变化(图4)。

2.5 环境对蝗虫微孢子虫海藻糖产生与消耗的影响

环境条件的变化并未显著影响蝗虫微孢子虫体内海藻糖水平。在20 °C水环境下，孢子体内海藻糖含量与对照组相比也无显著差异(图5)。

3 讨论

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蝗虫微孢子虫的生命周期涵盖环境中的休眠孢子形式和宿主细胞中的增殖形式^[26]。自引入中国以来，它被广泛用作防治蝗虫的生物制剂^[27-29]。然而，在运输和应用过程中，蝗虫微孢子虫可能面临-20 °C的冷冻和室温(尤其是水环境)下的储存。当孢子被投放至野外环境时，若无法迅速侵入宿主体内，则要面临光照、干燥、潮湿等多种环境压力。休眠阶段的蝗虫微孢子虫对不同环境条件的能量代谢和氧化应激的响应，反映了孢子对环境的适应能力，这对于其合理且大规模的应用至关重要。

本研究揭示，蝗虫微孢子虫对干燥环境展现出极强的抗性。即便在40 °C的高温条件下，干燥状态的孢子发芽率、感染蝗虫的生存曲线与对照组相比均无显著变化(图2B)。同时，ATP和ROS水平维持在较低水平(图3A、图4)，这表明干燥条件更易于使微孢子虫进入休眠状态。与极端微生物南极热土副地芽孢杆菌(Parageobacillus thermantarcticus)相似，相较于水合状态的孢子，干燥状态的微生物孢子对极端环境更具抵抗力^[30]。作为蝗虫微孢子虫环境阶段的细胞形态，孢子主要通过在空间上利用多种机制或在时间上经历长期休眠来实现分散，例如某些类型的真菌孢子在干燥状态下更易达到真正的休眠状态^[31]。辐射是自然界中常见的环境因子。当辐射作用于生物靶标时，会发生直接辐射效应(即DNA、蛋白质等细胞成分直接吸收能量)与间接辐射效应(即细胞靶标与水辐射分解产生的自由基发生相互作用)^[32-33]。孢子具备缓慢干燥、自然折叠、核心缓慢脱水等生理功能，从而保护其免受高温、干旱或其他分子的影响^[34]。本研究发现，在紫外线处理蝗虫微孢子虫24 h后，孢子ATP和ROS水平上升(图3、图4)，但发芽率并未下降(图1)，同时感染蝗虫的生存曲线与阳性对照组相比也无显著差异(图2C)。这表明干燥状态的孢子增强了蝗虫微孢子虫对紫外线的耐受能力。上述结果说明，缓慢的自然干燥使蝗虫微孢子虫进入真正的休眠状态，提高了其对环境的耐受性，即使长时间处于40 °C高温环境或遭受高剂量紫外辐射，这种干燥孢子有助于蝗虫微孢子虫(作为一种机会性病原体)的扩散，这也是作为生防制剂的蝗虫微孢子虫的一大优势特点。

相反，在20 °C水环境下，孢子ATP和ROS水平均显著上升，能量的消耗和ROS水平的增加导致孢子无法有效发芽。虽然海藻糖是真菌、细菌和昆虫的主要能量来源，但本研究发现蝗虫微孢子虫在休眠阶段并不利用海藻糖作为能量来源(图5)，而是以蛋白质作为主要的能量来源(图3B)。水环境中的孢子可能处于萌发状态，但由于缺乏其他刺激，孢子无法发芽，且能量受限，导致孢子陷入急性营养应激状态。在营养应激条件下，蛋白质作为生物体内的能量来源之一，成为孢子的主要能量来源^[21]。长时间的营养应激导致蝗虫微孢子虫孢子活力丧失，最终失去发芽能力(图1)，这也导致了微孢子虫感染蝗虫后，蝗虫的中位生存时间延长(图2A)，这一结果表明，在应用过程中，如果蝗虫微孢子虫不能立即施用于野外，将导致孢子活力下降，最终失去防治效果。

蝗虫微孢子虫专一寄生于蝗虫，孢子阶段是其作为细胞内寄生虫的过渡形态，处于对环境不敏感的状态。这一阶段对环境的抗性是保证其水平传播的重要途径。本研究发现，水环境会导致蝗虫微孢子虫的营养应激，长时间暴露于水环境会使孢子活力下降，失去对宿主的感染性。野外条件下，蝗虫可通过晒太阳提高体温以抑制真菌感染^[35]。因此，在干燥环境下，蝗虫微孢子虫保持低水平的能量代谢，孢子进入真正的休眠状态，高温不会引起其应激反应；而在高强度紫外照射下，虽然ATP和ROS水平上升，但发芽率无显著变化，仍能保持对宿主的感染力。这些结果不仅强调了蝗虫微孢子虫对野外环境的适应性，也说明了以干燥固体形式在常温下保存蝗虫微孢子虫制剂的可行性。

4 结论

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本研究通过模拟蝗虫微孢子虫在实际应用中可能遭遇的环境条件，探究了这些条件对其能量代谢与应激反应的影响。通过检测孢子发芽率、感染后蝗虫的生存曲线、ATP水平、蛋白量、ROS水平以及海藻糖的变化，发现自然干燥的蝗虫微孢子虫孢子对环境的适应能力显著增强。这种干燥状态的孢子可作为其主要保存与应用形式。本研究证实了蝗虫微孢子虫耐干旱、高温和抗紫外线的生物学特性，为后续蝗虫微孢子虫新型制剂的开发与应用提供了坚实的理论支持。

基金

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新疆维吾尔自治区自然科学基金(2023D01A45)
新疆维吾尔自治区“三农”骨干人才培养项目(2024SNGGGCC039)
天山英才领军人才项目(TSYCLJ0016)

参考文献

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文献

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2025年第65卷第5期

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doi: 10.13343/j.cnki.wsxb.20240804

接收时间：2024-12-12
首发时间：2026-02-05
出版时间：2025-05-04

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作者

出版历史

收稿日期：2024-12-12
录用日期：2025-01-07

基金

Natural Science Foundation of Xinjiang Uygur Autonomous Region(2023D01A45)

新疆维吾尔自治区自然科学基金(2023D01A45)

Key Personnel Training Program for Agriculture, Rural Areas, and Rural Residents of Xinjiang Uygur Autonomous Region(2024SNGGGCC039)

新疆维吾尔自治区“三农”骨干人才培养项目(2024SNGGGCC039)

Tianshan Leading Talents Program(TSYCLJ0016)

天山英才领军人才项目(TSYCLJ0016)

作者信息

^1.新疆师范大学生命科学学院，中亚区域跨境有害生物联合控制国际研究中心，新疆特殊环境物种多样性应用与调控重点实验室，新疆乌鲁木齐

^2.塔城昆虫迁飞生物学新疆野外科学观测研究站，新疆塔城

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https://castjournals.cast.org.cn/joweb/wswxb/CN/10.13343/j.cnki.wsxb.20240804

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2种不同金属材料的力学参数

科 Family	属数 Number of genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)	属 Genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)
鹅膏菌科Amanitaceae	2	11	5.26	鹅膏菌属 Amanita	10	4.78
小菇科 Mycenaceae	2	12	5.74	丝盖伞属 Inocybe	5	2.39
多孔菌科 Polyporaceae	8	14	6.70	蜡蘑属 Laccaria	5	2.39
红菇科 Russulaceae	3	23	11.00	小皮伞属 Marasmius	6	2.87
				小菇属 Mycena	11	5.26
				光柄菇属 Pluteus	5	2.39
				红菇属 Russula	17	8.13
				栓菌属 Trametes	5	2.39

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