热带作物学报

基因名称Gene name	正向引物（5′–3′）Forward primer (5′–3′)	反向引物（5′–3′）Reverse primer (5′–3′)
PsmFAR-1	ACACCCTTTCCAGCTCCTATGAG	CATGAGGCCCAGTATTGTTGTACC
PsmFAR-2	ATCAGTTGGAGGCGGGTAAGG	CACGGTGCTGCCACTATTCG
PsmFAR-3	TGTCCATGATGACCTCTTTAACCAG	CAGGGAACAAAGCATAAGAGTTTGC
PsmFAR-4	CCGCACTAATCCAATTCCCACTC	TTATCATGCCAACACTGGAAGATCC
PsmFAR-5	ATTGCAGGAGCGACTAGATTGTTAC	CAGGTTCTGGACTGGGAATTGTAAG
PsmFAR-6	AGCTGTTGGGTTAGGTATAATGAGA	CCAATTTCCCAACCTACAGCAA
PsmFAR-7	ATTGCATTTGTTACACGATCTCCAG	CCAATGGCATTAATTTTAGCAGGTG
PsmFAR-8	TGGAGTGGATGGACGCAGATAC	TTGTGTAGGTGTAACTGTTCGGATG
PsmFAR-9	CTGCAGGTGTAGGAATTGGGT	TCACCAGGTACCATATCAAGTTT
PsmFAR-10	CATCTACATCTCTACGGCATACGC	AATGAGTGCTGGTGAAAGACATCC
PsmFAR-11	ACAAGCCAGTTCTTTACCTCAAGC	GCAACAGCAGAGCGAGTCATC
PsmFAR-12	CAAAGTTGCCGATTTAGTTCCAGTG	TCTGTCGTGTATCATCGCTGTTATTG
PsmFAR-13	TCGTTCACTCATCAACAGCATTCTG	AAGCATCAACACTCATCCAAGTACC
PsmFAR-14	TGTACGGTCCAGTCGGTATGATG	GTCTTCTCTTGCGTTACCCACTTG
PsmFAR-15	ACCCTGTGCCTCCTGTGATAAG	AAATGACTGCCAGAGTATCCGTAAC
PsmFAR-16	AGCTGCTGTTACTATTCCTGTTGG	AGACCTTCTCAAGTGACTACATTAGC
PsmFAR-17	AGGAATCAGATTGCTACCCAGTTTG	CAGTTGGTCCATACAGGTTGTCTATC
PsmFAR-18	CAACTCGGATAAGACCTGCCATAATAC	ATGATGTTCCCGCCTGTATATTTCG
PsmFAR-19	AGGTACTTGATGTGGCATGATATACTG	TGTTGTACGGCGATTACCAGTTG
PsmFAR-20	AGGAATCAGCAAAGAAGATCAGCAG	AGAGGGTGGATACGTGAACTACTAC
PsmFAR-21	GGTGATGAAGCCTACAGAACTGATAG	CTGCCATTTGTTTAGTGAGCGTATATG
PsmFAR-22	GACACACTAACCGAAA	GACTACCAAATCTACG
PsmFAR-23	TCGCCCATCAGTCATTGTTTCTAC	CAAGTCCTACACCAACTGTCATACC
GAPDH	TGTTTGTTTGTGGAGT	GAATGATGTTTTGAGC

基因名称Gene name	正向引物（5′–3′）Forward primer (5′–3′)	反向引物（5′–3′）Reverse primer (5′–3′)
PsmFAR-1	ACACCCTTTCCAGCTCCTATGAG	CATGAGGCCCAGTATTGTTGTACC
PsmFAR-2	ATCAGTTGGAGGCGGGTAAGG	CACGGTGCTGCCACTATTCG
PsmFAR-3	TGTCCATGATGACCTCTTTAACCAG	CAGGGAACAAAGCATAAGAGTTTGC
PsmFAR-4	CCGCACTAATCCAATTCCCACTC	TTATCATGCCAACACTGGAAGATCC
PsmFAR-5	ATTGCAGGAGCGACTAGATTGTTAC	CAGGTTCTGGACTGGGAATTGTAAG
PsmFAR-6	AGCTGTTGGGTTAGGTATAATGAGA	CCAATTTCCCAACCTACAGCAA
PsmFAR-7	ATTGCATTTGTTACACGATCTCCAG	CCAATGGCATTAATTTTAGCAGGTG
PsmFAR-8	TGGAGTGGATGGACGCAGATAC	TTGTGTAGGTGTAACTGTTCGGATG
PsmFAR-9	CTGCAGGTGTAGGAATTGGGT	TCACCAGGTACCATATCAAGTTT
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PsmFAR-17	AGGAATCAGATTGCTACCCAGTTTG	CAGTTGGTCCATACAGGTTGTCTATC
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基因名称Gene name	氨基酸数量Number of amino acids	分子量Molecular weight/Da	理论等电点Theoretical pI	不稳定系数Instability index	脂肪系数Aliphatic index	平均亲水系数Grand average of hydropathicity	亚细胞定位Sub-cellular localization
PsmFAR-1	125	14 069.22	8.46	27.14	84.88	–0.145	细胞质
PsmFAR-2	136	15 441.99	6.24	38.93	93.24	–0.229	细胞质
PsmFAR-3	63	7313.43	4.93	44.58	109.84	–0.171	细胞质
PsmFAR-4	320	37 094.96	7.72	50.43	100.78	–0.114	细胞质
PsmFAR-5	511	59 699.28	8.58	37.55	98.20	–0.055	质膜
PsmFAR-6	390	44 414.84	5.97	39.26	97.18	–0.296	细胞质
PsmFAR-7	389	45 485.01	5.99	47.96	95.71	–0.502	细胞质
PsmFAR-8	460	52 389.21	8.97	35.77	101.70	–0.085	细胞质
PsmFAR-9	292	33 809.20	8.75	39.61	98.12	–0.152	细胞质
PsmFAR-10	548	63 607.33	8.09	33.63	94.43	–0.146	细胞质
PsmFAR-11	531	60 625.64	9.17	37.34	96.93	–0.101	细胞质
PsmFAR-12	533	61 534.50	8.10	35.27	98.20	–0.086	线粒体
PsmFAR-13	528	60 403.13	9.22	37.27	96.70	–0.016	细胞质
PsmFAR-14	548	62 576.78	8.62	30.86	102.04	–0.039	质膜
PsmFAR-15	487	55 425.40	8.76	40.77	92.53	–0.170	细胞质
PsmFAR-16	507	58 469.31	8.83	38.77	98.24	–0.097	细胞质
PsmFAR-17	498	57 828.15	8.84	32.08	94.14	–0.186	细胞质
PsmFAR-18	507	58 439.00	8.94	40.82	99.84	–0.103	细胞质
PsmFAR-19	508	57 996.71	9.22	46.88	105.31	0.086	细胞质
PsmFAR-20	560	64 518.52	7.97	43.17	94.82	–0.088	细胞质
PsmFAR-21	508	58 050.82	9.19	30.09	98.23	–0.115	细胞核
PsmFAR-22	570	65 649.55	6.93	34.13	99.00	–0.062	质膜
PsmFAR-23	575	66 180.04	8.91	35.89	104.78	–0.026	质膜

基因名称Gene name	氨基酸数量Number of amino acids	分子量Molecular weight/Da	理论等电点Theoretical pI	不稳定系数Instability index	脂肪系数Aliphatic index	平均亲水系数Grand average of hydropathicity	亚细胞定位Sub-cellular localization
PsmFAR-1	125	14 069.22	8.46	27.14	84.88	–0.145	细胞质
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PsmFAR-17	498	57 828.15	8.84	32.08	94.14	–0.186	细胞质
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PsmFAR-20	560	64 518.52	7.97	43.17	94.82	–0.088	细胞质
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PsmFAR-22	570	65 649.55	6.93	34.13	99.00	–0.062	质膜
PsmFAR-23	575	66 180.04	8.91	35.89	104.78	–0.026	质膜

基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%	基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%
PsmFAR-1	20.00	21.60	58.40	PsmFAR-13	48.67	14.02	37.31
PsmFAR-2	58.82	15.44	25.74	PsmFAR-14	47.45	13.32	39.23
PsmFAR-3	34.92	15.87	49.21	PsmFAR15	42.51	15.40	42.09
PsmFAR-4	42.19	16.88	40.94	PsmFAR-16	46.75	14.60	38.66
PsmFAR-5	48.53	14.29	37.18	PsmFAR-17	46.99	14.26	38.76
PsmFAR-6	48.21	15.38	36.41	PsmFAR-18	46.94	14.60	38.46
PsmFAR-7	44.99	13.37	41.65	PsmFAR-19	49.21	14.76	36.02
PsmFAR-8	44.13	15.65	40.22	PsmFAR-20	45.18	13.04	41.79
PsmFAR-9	40.41	17.81	41.78	PsmFAR-21	45.08	14.57	40.35
PsmFAR-10	46.17	13.14	40.69	PsmFAR-22	44.91	12.81	42.28
PsmFAR-11	47.83	13.94	38.23	PsmFAR-23	48.87	13.57	37.57
PsmFAR-12	47.65	13.51	38.84

基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%	基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%
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编号^*No.	基因Gene	功能预测Function prediction	相关物种Related species	相关基因Related gene	GenBank登录号GenBank accession
Ⅱ	PsmFAR-11, PsmFAR-12	蜡质合成	Apis mellifera	AmFAR	ADJ56408.1
Ⅳ	PsmFAR-19, PsmFAR-21	繁殖、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR4	AWJ25028.1
Ⅴ	PsmFAR-1, PsmFAR-2, PsmFAR-8,PsmFAR-13	发育、繁殖、蜡质合成、信息素合成	Chilo suppressalis	CsFAR	UVF71834.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR3	AWJ25030.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR10	AWJ25021.1
	Ericerus pela	EpFAR	AGK27745.1
	Maruca vitrata	MvFAR	UEV87807.1
Ⅶ	PsmFAR-4, PsmFAR-5, PsmFAR-6,PsmFAR-7, PsmFAR-9	繁殖、蜡质合成、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR1	AWJ25018.1
	NlFAR8	AWJ25023.1
	NlFAR11	XP_022197920.2
	NlFAR12	XP_022197928.2
	Phenacoccus solenopsis	PsFAR2	ANN23960.1
Ⅷ	PsmFAR-10, PsmFAR-14, PsmFAR-20,PsmFAR-22, PsmFAR-23	蜡质合成	Phenacoccus solenopsis	PsFAR1	UYO73019.1
Ⅸ	PsmFAR-3, PsmFAR-15, PsmFAR-16,PsmFAR-17, PsmFAR-18	发育、繁殖、体表角质层合成、解毒	Phenacoccus solenopsis	PsFAR3	ANN23959.1
	Drosophila melanogaster	DmFAR	NP_651652.2
	Nilaparvata lugens	NlFAR6	AWJ25025.1
	NlFAR7	AWJ25024.1
	NlFAR9	AWJ25022.1

编号^*No.	基因Gene	功能预测Function prediction	相关物种Related species	相关基因Related gene	GenBank登录号GenBank accession
Ⅱ	PsmFAR-11, PsmFAR-12	蜡质合成	Apis mellifera	AmFAR	ADJ56408.1
Ⅳ	PsmFAR-19, PsmFAR-21	繁殖、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR4	AWJ25028.1
Ⅴ	PsmFAR-1, PsmFAR-2, PsmFAR-8,PsmFAR-13	发育、繁殖、蜡质合成、信息素合成	Chilo suppressalis	CsFAR	UVF71834.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR3	AWJ25030.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR10	AWJ25021.1
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	Maruca vitrata	MvFAR	UEV87807.1
Ⅶ	PsmFAR-4, PsmFAR-5, PsmFAR-6,PsmFAR-7, PsmFAR-9	繁殖、蜡质合成、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR1	AWJ25018.1
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	NlFAR9	AWJ25022.1

桑小头木虱FAR基因家族鉴定及其功能预测分析

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林雅婷 ¹ , 郝阳洋 ² , 韦红显 ² , 耿涛 ² , 王树昌 ²^,^* , 卢芙萍 ²^,^*

热带作物学报 | 植物保护与生物安全 2025,46(6): 1502-1513

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热带作物学报 |植物保护与生物安全 2025 , 46 (6) : 1502 -1513

桑小头木虱FAR基因家族鉴定及其功能预测分析

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林雅婷¹, 郝阳洋², 韦红显², 耿涛², 王树昌²^,^*, 卢芙萍²^,^*

作者信息

^1.海南大学，海南海口　570228

^2.中国热带农业科学院环境与植物保护研究所/农业农村部热带作物病虫害综合治理重点实验室/海南省热带农业有害生物监测与控制重点实验室，海南海口　571101

通讯作者:

^* 王树昌（WANG Shuchang），E-mail：wangshuchang2001@163.com

卢芙萍（LU Fuping），E-mail：fuping_36@163.com。

Identification and Functional Analysis of FAR Gene Family in Paurocephala sauteri

Yating LIN¹, Yangyang HAO², Hongxian WEI², Tao GENG², Shuchang WANG²^,^*, Fuping LU²^,^*

Affiliations

^1.Hainan University, Haikou, Hainan 570228, China

^2.Institute of Environment and Plant Protection, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences / Key Laboratory of Integrated Tropical Crop Pest Management, Ministry of Agriculture and Rural Affairs / Hainan Key Laboratory of Tropical Agricultural Pest Monitoring and Control, Haikou, Hainan 571101, China

出版时间: 2025-06-25 doi: 10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.022

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摘要

收起

桑小头木虱（Paurocephala sauteri Enderlein）是热带亚热带桑树重要害虫，主要为害桑树顶芽和嫩叶，导致叶片卷曲，难以展开，同时可分泌蜡质，诱发煤烟病，导致桑叶产量和质量显著下降；为害小苗，可致其全株死亡，严重威胁热带蚕桑产业的多元化发展。脂酰辅酶A还原酶（FAR）存在于各种生物体内，参与脂肪酸衍生物的生物合成，进而参与繁殖、两性信息识别与交流、蜡质合成等多项生命活动过程。本研究共筛选到23个桑小头木虱FAR基因，蛋白分析表明，其中大多数为碱性蛋白，具有亲水性；亚细胞定位预测发现，17个FAR蛋白定位于细胞质，1个定位于线粒体，1个定位于细胞核，4个定位于质膜，说明PsmFAR基因发挥功能的主要场所是细胞质。结合其他已知昆虫FAR基因的功能，以及桑小头木虱若虫、雌成虫、雄成虫体内及不同部位FAR基因的表达分析发现，桑小头木虱FAR基因可能参与发育、繁殖、蜡质合成、体表角质层合成、信息素合成及解毒等多个生物学功能，除7个基因可能仅参与蜡质合成功能外，其余16个基因可能参与多个生物学功能，涉及繁殖的有16个（69.56%），涉及蜡质合成的亦有16个（69.56%），与其体表角质层合成相关的有12个（52.17%），与发育相关的有9个（39.13%），与解毒相关的有5个（21.74%），与信息素合成相关的有4个（17.39%）。本研究在转录组测序分析的基础上对桑小头木虱FAR基因家族进行鉴定、序列组成及表达分析，探究FAR基因在桑小头木虱生命活动中的功能，为其高效防控技术和针对性药剂的研发和应用提供理论依据。后续功能的进一步验证将为以FAR基因为靶标的精准防控药剂的研发提供依据。

关键词

桑小头木虱 / FAR基因家族 / 亚细胞定位 / 基因表达 / 功能预测分析

Abstract

收起

Paurocephala sauteri Enderlein is an important pest of tropical and subtropical mulberry, which seriously threatens the diversified development of tropical sericulture industry. Fatty acyl-CoA reductase (FAR) exists in various organisms and participates in the biosynthesis of fatty acid derivatives, and then participates in many life activities such as wax synthesis, reproduction, sexual information recognition and communication. A total of 23 FAR genes were screened in this study. Protein analysis showed that most of them were alkaline proteins with hydrophilicity. Subcellular localization prediction found that 17 FAR proteins were located in the cytoplasm, one FAR proteinin the mitochondria, one FAR protein in the nucleus, and four FAR proteins in the plasma membrane, indicating that the main place for the PsmFAR gene to function was the cytoplasm. Combined with the function of other known insect FAR genes and the expression analysis of FAR genes in nymphs, female adults, male adults and different parts of P. sauteri, it was found that FAR genes could be involved in development, reproduction, wax synthesis, cuticle synthesis, pheromone synthesis and detoxification. In addition to seven genes only involved in wax synthesis, the remaining 16 genes may be involved in multiple biological functions, including 16 genes (69.56%) involved in reproduction, 16 genes (69.56%) involved in wax synthesis, 12 genes (52.17%) involved in cuticle synthesis, and nine genes (39.13%) involved in development. There were five genes (21.74%) related to detoxification and four genes (17.39%) related to pheromone synthesis. In this study, based on the transcriptome sequencing analysis, the identification, sequence composition and expression analysis of the FAR gene family were carried out to explore the function of the FAR gene in the life activities of the P. sauteri, and to provide a theoretical basis for its efficient prevention and control technology and the development and application of targeted insecticides. Further verification of subsequent functions would provide a basis for the development of precise prevention and control agents targeting the FAR gene.

Key words

Paurocephala sauteri Enderlein / FAR gene family / subcellular localization / gene expression / functional prediction analysis

引用本文

林雅婷, 郝阳洋, 韦红显, 耿涛, 王树昌, 卢芙萍. 桑小头木虱FAR基因家族鉴定及其功能预测分析. 热带作物学报, 2025 , 46 (6) : 1502 -1513 . DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.022

Yating LIN, Yangyang HAO, Hongxian WEI, Tao GENG, Shuchang WANG, Fuping LU. Identification and Functional Analysis of FAR Gene Family in Paurocephala sauteri[J]. Chinese Journal of Tropical Crops, 2025 , 46 (6) : 1502 -1513 . DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.022

正文

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桑小头木虱（Paurocephala sauteri Enderlein）是热带亚热带桑树重要害虫^[1-7]，主要为害桑树顶芽和嫩叶，导致叶片卷曲，难以展开，同时可分泌蜡质，诱发煤烟病，导致桑叶产量和质量显著下降；为害小苗，可致其全株死亡，严重威胁热带蚕桑产业的多元化发展^[8]。

脂酰辅酶A还原酶（fatty acyl-CoA reductase，FAR）属于NAD（P）H依赖型氧化还原酶家族蛋白，能将脂肪酸转化为脂肪醇^[9]，在自然界中普遍存在，在绝大多数生物体中具有重要生物学功能^[10]，如，FAR参与小眼虫（Euglena gracilis）的能量储备^[11]，参与植物体表角质层蜡等的合成^[12-14]；在仓鸮（Tyto alba）、家鸡（Gallus gallus domesticus）和家鹅（Anser anser）等鸟类体内参与蜡酯生物合成和其他途径，如醚脂合成^[15]；在哺乳动物体内，参与醚脂和蜡酯的生物合成^[16-17]。近年来，大量研究表明，FAR在昆虫多种生命活动中发挥着重要作用，如FAR可通过调节粉蚧所分泌蜡质的主要成分“表皮碳氢化合物”（CHC）的产生来促进其蜡的生物合成，从而有助于粉蚧适应失水和杀虫剂等的胁迫^[18]；FAR可以将蜜蜂的脂肪酸转化为醇，并生物合成产生高水平的中长链蜡单酯^[19]；FAR参与多种昆虫，如玉米夜蛾性信息素以及白蜡虫蜡质的生物合成^[20-21]；褐飞虱体内的FAR基因家族有17个基因组成，其中10个基因分别对褐飞虱的CHC的产生、角质层合成、繁殖有影响^[22]；B型烟粉虱体内FAR基因家族有21个基因组成，其中BtFAR11与烟粉虱表皮的蜡酯形成有关^[23]。FAR在昆虫生殖，尤其是半翅目昆虫的繁殖过程中具有重要的作用，可干扰FAR基因的表达显著抑制半翅目昆虫雌虫的繁殖力，主要表现为寿命缩短、产卵量减少或孵化率降低等^[24-25]。

蜡质分泌是伴随桑小头木虱若虫和雌成虫全生命过程的重要生理现象，为了了解蜡质合成相关重要酶FAR及其基因在桑小头木虱的生命活动中发挥的重要作用，本研究基于转录组测序数据，对桑小头木虱FAR基因家族进行鉴定、序列组成及组织表达分析，探究FAR基因在桑小头木虱生命活动中的功能，为桑小头木虱高效防控技术和针对性药剂的研发和应用提供理论依据。

1　材料与方法

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1.1　材料

桑小头木虱若虫和成虫采自海南省儋州市试验场七队（109°29′47.072″E，19°34′54.142″N）桑园。

1.2　方法

1.2.1　桑小头木虱FAR基因家族的筛选与鉴定

根据桑小头木虱转录组序列对其FAR基因家族各基因的CDS序列进行克隆，然后从Uniport数据库（https://www.uniprot.org/）下载FAR蛋白序列，在桑小头木虱转录组蛋白库中进行本地BLAST搜索^[26]。再利用Interpro网站（https://www.ebi.ac.uk/interpro/）下载FAR的结构域信息^[27]，利用TBtools软件筛选出含有FAR结构域的蛋白序列^[28]，由此获得桑小头木虱转录组预测的FAR。将筛选的候补基因上传到NCBI中的CD-search（https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/bwrpsb/bwrpsb.cgi）进行结构域预测，并利用TBtools软件进行可视化分析，将含有2个完整结构域的序列、含有1种结构域但在线BLAST注释为FAR的序列均保留作为最终的FAR基因。

1.2.2　桑小头木虱FAR基因家族的蛋白理化性质预测

利用ExPASy在线数据库（http://web.expasy.org/）对筛选的桑小头木虱FAR家族成员进行蛋白理化性质预测^[29]。并利用SOPMA（https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=/NPSA/npsa_sopma.html）进行蛋白质二级结构预测分析。利用WoLF PSORT（https://wolfpsort.hgc.jp/）预测亚细胞定位^[30]。

1.2.3　桑小头木虱FAR基因家族的保守基序预测

利用TBtools软件进行桑小头木虱FAR基因家族保守基序分析，保守基序的最大数量设置为17，其他参数默认^[31]。

1.2.4　桑小头木虱FAR基因家族的系统进化树构建

利用TBtools软件对桑小头木虱FAR家族蛋白序列进行系统进化树构建；从NCBI数据库（https://www.ncbi.nlm.nih.gov/）中下载已报道其他昆虫（中黑盲蝽、褐飞虱、白蜡蚧、绵粉蚧、烟粉虱、夜蛾、螟蛾、巢蛾、家蚕、黑腹果蝇和蜜蜂）的FAR蛋白序列，利用TBtools软件进行系统进化树构建^[32-33]，结合已报道FAR基因功能进行桑小头木虱FAR基因功能预测分析^[33]。

1.2.5　桑小头木虱FAR基因家族表达分析

通过实时荧光定量PCR（RT-qPCR）对FAR基因家族在桑小头木虱若虫、雌成虫、雄成虫的表达量进行分析，并选取雌雄成虫表达量显著的基因进行头胸部、腹部的表达量分析。根据候选基因的CDS序列，通过生工生物工程（上海）股份有限公司在线软件设计引物（表1），利用RNAprep Pure动物组织总RNA提取试剂盒提取桑小头木虱RNA，使用FastKing cDNA第1链合成试剂盒进行反转录，合成cDNA。以GAPDH为内参，用2×SYBR Green qPCR Premix进行RT-qPCR。

2　结果与分析

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2.1　桑小头木虱FAR基因家族鉴定及蛋白理化性质预测

根据Uniport数据库下载的FAR蛋白序列以及Interpro网站下载FAR的结构域信息，在桑小头木虱转录组中进行鉴定，最终获得23个FAR基因。蛋白理化性质分析表明，

23个桑小头木虱FAR家族蛋白的氨基酸序列长度最短的为63 aa，最长的为575 aa，分子量为7317.43~66 180.04 Da，理论等电点为4.93~9.22，大部分在7.00以上，表明该家族成员大多为碱性蛋白。不稳定系数为27.14~50.43，其中16个FAR成员的不稳定系数小于40，预测为稳定蛋白，不易降解，7个FAR成员的不稳定系数大于40，预测为不稳定蛋白。脂肪系数为84.88~109.84，平均亲水系数为-0.502~0.086，大部分小于0，表明该家族蛋白成员大多具有亲水性。亚细胞定位预测发现，17个FAR蛋白定位于细胞质，1个定位于线粒体，1个定位于细胞核，4个定位于质膜（表2）。

对所有FAR家族成员蛋白的二级结构预测表明，其结构由α-螺旋、延伸链和无规则卷曲组成，并且以α-螺旋和无规卷曲为主要构件（表3）。

2.2　桑小头木虱FAR基因家族的保守基序预测

保守基序预测结果表明，桑小头木虱FAR基因家族成员共包含17个motif，其中motif 2、motif 3、motif 5、motif 8出现次数最多，均为21次，motif 4出现20次，motif 1出现18次，motif 6和motif 13出现17次，motif 7、motif 9和motif 10出现16次，motif 11和motif 12出现15次，motif 15出现5次，motif 16出现4次，motif 14和motif 17出现2次，次数最少。其中motif 7、motif 9属于FAR C结构域；除PsmFAR-1、PsmFAR-2、PsmFAR-3以外的基因中，motif 2、motif 3、motif 4、motif 5、motif 8属于NADB Rossmann结构域（图1）。

2.3　桑小头木虱FAR基因家族功能预测分析

通过构建桑小头木虱与已报道昆虫（中黑盲蝽、褐飞虱、白蜡蚧、绵粉蚧、烟粉虱、夜蛾、螟蛾、巢蛾、家蚕、黑腹果蝇和蜜蜂）FAR蛋白序列系统进化树并对其基因功能进行预测分析，结果表明，在所划分的9个亚族中，23个桑小头木虱FAR基因家族成员被划分至6个亚族，分别为亚族Ⅱ（PsmFAR-11和PsmFAR-12）、亚族Ⅳ（PsmFAR-19和PsmFAR-21）、亚族Ⅴ（PsmFAR-1、PsmFAR-2、PsmFAR-8和PsmFAR-13）、亚族Ⅶ（PsmFAR-4、PsmFAR-5、PsmFAR-6、PsmFAR-7和PsmFAR-9）、亚族Ⅷ（PsmFAR-10、PsmFAR-14、PsmFAR-20、PsmFAR-22和PsmFAR-23）、亚族Ⅸ（PsmFAR-3、PsmFAR-15、PsmFAR-16、PsmFAR-17和PsmFAR-18）（图2）。其中亚族Ⅱ中已报道的AmFAR基因主要与蜡质合成相关；亚族Ⅳ中的NlFAR4基因主要与繁殖和体表角质层合成相关；亚族Ⅴ中已报道的5个基因NlFAR3、CsFAR、EpFAR、NlFAR10和MvFAR在发育、繁殖、蜡质合成、信息素合成中发挥重要作用；亚族Ⅶ中仅包含桑小头木虱的5个FAR基因，自成一族，根据相邻2个亚族中的已知基因功能，分析这些基因可能参与繁殖、蜡质合成、体表角质层合成；亚族Ⅷ中的PsFAR1基因主要在蜡质的生物合成中发挥着重要作用，亚族Ⅸ中的5个基因（PsFAR3、DmFAR、NlFAR6、NlFAR7和NlFAR9）主要与发育、繁殖、体表角质层合成和解毒相关。根据预测，桑小头木虱体内FAR基因家族中，除7个基因可能仅参与蜡质合成功能外，其余16个基因可能参与多个生物学功能，涉及繁殖的有16个（69.56%），涉及蜡质合成的亦有16个（69.56%），与其体表角质层合成相关的有12个（52.17%），与发育相关的有9个（39.13%），与解毒相关的有5个（21.74%），与信息素合成相关的有4个（17.39%）（表4）。

2.4　桑小头木虱FAR基因在不同虫态中的表达分析

对桑小头木虱五龄若虫、雌成虫、雄成虫FAR基因家族的表达特性进行分析表明，若虫体内有15个FAR基因（PsmFAR-1、PsmFAR-2、PsmFAR-3、PsmFAR-4、PsmFAR-5、PsmFAR-6、PsmFAR-8、PsmFAR-10、PsmFAR-11、PsmFAR-13、PsmFAR-14、PsmFAR-19、PsmFAR-20、PsmFAR-21、PsmFAR-22）的表达量均显著高于雌成虫、雄成虫（图3），其中有13个基因（PsmFAR-1、PsmFAR-2、PsmFAR-4、PsmFAR-5、PsmFAR-6、PsmFAR-8、PsmFAR-10、PsmFAR-11、PsmFAR-13、PsmFAR-14、PsmFAR-19、PsmFAR-20、PsmFAR-22）在系统进化树中指征可能与蜡质合成相关；1个基因（PsmFAR-3）指征可能与发育、繁殖、体表角质层合成、解毒相关；1个基因（PsmFAR-21）指征可能与繁殖、体表角质层合成相关（表4）。

雌成虫体内有3个基因（PsmFAR-9、PsmFAR-16和PsmFAR-17）的表达量显著高于雄成虫和若虫，其中PsmFAR-16、PsmFAR-17在若虫、雄成虫中的表达量无显著差异（图3），这3个基因均可能涉及繁殖和体表角质层合成功能，同时PsmFAR-9还可能在蜡质合成中发挥作用，PsmFAR-16和PsmFAR-17亦可能参与发育和解毒功能（表4）。

雄成虫体内有2个基因（PsmFAR-12和PsmFAR-18）的表达量均高于雌成虫和若虫，其中PsmFAR-12的表达量显著高于雌成虫和若虫（图3），在系统发育树中，该基因可能主要参与蜡质合成，PsmFAR-18与雌成虫的表达量无显著差异，但显著高于若虫，在系统发育树中，该基因可能主要表征发育、繁殖、体表角质层合成、解毒（表4）。

雌成虫和雄成虫体内有2个基因（PsmFAR-7和PsmFAR-23）的表达量显著高于若虫，且在雌成虫和雄成虫间无显著差异（图3），PsmFAR-23基因在系统发育树中归属亚族Ⅷ，可能与蜡质合成相关，PsmFAR-7则可能涉及繁殖、蜡质合成及体表角质层合成（表4）。

PsmFAR-15在若虫和成虫体内的表达无显著差异，全生育期稳定表达（图3），在系统发育树中，该基因可能主要涉及发育、繁殖、体表角质层合成及解毒等功能（表4）。

2.5　桑小头木虱FAR基因在不同部位中的表达分析

由2.4的桑小头木虱不同虫态体内FAR基因的表达分析中发现，9个FAR基因（PsmFAR-3、PsmFAR-4、PsmFAR-14、PsmFAR-16、PsmFAR-17、PsmFAR-19、PsmFAR-20、PsmFAR-21和PsmFAR-22）在雌成虫和雄成虫体内的表达量差异较大，相差2倍以上，7个FAR基因（PsmFAR-7、PsmFAR-9、PsmFAR-12、PsmFAR-16、PsmFAR-17、PsmFAR-18和PsmFAR-23）在成虫体内的表达量显著高于若虫，因此对这14个基因在成虫体内不同部位的表达差异作进一步分析。结果表明，在分析的14个FAR基因中，在雌成虫、雄成虫头胸部仅2个基因（PsmFAR-3和PsmFAR-23）的表达量显著高于腹部；在雄成虫头胸部有2个基因（PsmFAR-4和PsmFAR-21）的表达量高于腹部，而这2个基因在雌成虫中则腹部显著高于头胸部（图4）。

在雌成虫、雄成虫腹部有3个基因（PsmFAR-14、PsmFAR-19、PsmFAR-20）的表达量显著高于头胸部；在雌成虫腹部有5个基因（PsmFAR-4、PsmFAR-16、PsmFAR-17、PsmFAR-21、PsmFAR-22）的表达量显著高于头胸部，在雄成虫腹部有4个基因（PsmFAR-7、PsmFAR-9、PsmFAR-12、PsmFAR-18）的表达量显著高于头胸部（图4）。

3　讨论

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FAR基因家族编码CHC合成酶，CHC和重要的脂肪酸合成途径共享基因，影响昆虫的发育、繁殖、蜡质合成、体表角质层合成、信息素合成及解毒等功能^[22-24,34]。基因家族成员的差异使物种产生不同的差异和生态适应性^[35]。本研究基于桑小头木虱的转录组数据，结合已知的多种昆虫FAR基因家族中各基因的功能，对桑小头木虱FAR基因家族进行鉴定，并对不同基因的功能进行分析预测，结果在桑小头木虱体内共获得23个FAR候选基因，与褐飞虱的数量相似^[24]。蛋白特性分析表明，其大多为碱性蛋白，这与烟粉虱^[23]、白蜡虫^[26]的理化性质较为相似。亚细胞定位预测显示桑小头木虱的FAR基因大多定位在细胞质，与白蜡虫FAR基因家族的预测结果^[36]相同，说明PsmFAR基因发挥功能的主要场所是细胞质。

结合其他已知昆虫的FAR基因功能，以及桑小头木虱若虫、雌成虫、雄成虫体内23个FAR基因的表达分析发现，桑小头木虱的23个FAR基因可能参与发育、繁殖、蜡质合成、体表角质层合成、信息素合成及解毒等多个生物学功能，其中16个基因（69.56%）可能涉及繁殖和蜡质合成功能，说明FAR基因家族可能在桑小头木虱的繁殖及重要生理活动中发挥着重要作用，研究也初步证实干扰桑小头木虱PsmFAR-22基因后，蜡质合成及繁殖受到显著影响（待发表），后续功能的进一步验证将为以FAR基因为靶标的精准防控药剂的研发提供依据。

若虫体内有15个FAR基因的表达量显著高于雌成虫和雄成虫，其中有13个基因在系统进化树中指征可能与蜡质合成相关，而桑小头木虱若虫期全程分泌蜡质，作为一项重要生理功能，蜡质分泌可能作为桑小头木虱针对性防控药剂研发的重要靶标。白蜡虫的FAR基因家族有22个基因，其中有5个基因与泌蜡功能相关^[37]。PsmFAR-15在若虫和成虫体内的表达无显著差异，全生育期稳定表达，且表达量较高，在系统发育树中，PsmFAR-15与PsFAR3、DmFAR、NlFAR6、NlFAR7、NlFAR9分为同一亚族，可能有相似的功能，如PsFAR3影响昆虫发育和对农药的解毒^[38]，DmFAR影响胚胎发育^[39]，NlFAR6影响繁殖，NlFAR7影响CHC生物合成以及角质层合成，NlFAR9影响角质层合成以及繁殖^[22]，因此推测PsmFAR-15可能与桑小头木虱的发育、繁殖、角质层合成、CHC生物合成及对农药的解毒等相关。PsmFAR-12和PsmFAR-18在雄成虫体内的表达量均高于雌成虫和若虫，其中PsmFAR-12的表达量显著高于雌成虫和若虫，在系统发育树中，该基因与AmFAR的同源关系较近^[19]，而AmFAR影响蜡质合成，推测PsmFAR-12可能主要参与蜡质合成；雄成虫体内PsmFAR-18的表达量与雌成虫无显著差异，但显著高于若虫，推测该基因可能与雄成虫特有的蜜露合成相关。PsmFAR-12是否参与雄成虫特有的蜜露合成及其他生理功能还有待验证，目前已研究昆虫FAR基因的功能尚不完全，需进一步通过基因敲除研究去证实。

头胸部、腹部FAR基因的表达分析发现，在分析的14个FAR基因中，在雌雄成虫头胸部仅PsmFAR-3和PsmFAR-23的表达量显著高于腹部，这与检测的白蜡虫^[40]FAR基因表达量结果较为相似。桑小头木虱腹部含有精巢、卵巢结构，对这些差异显著的FAR基因进行研究，分析这些基因在桑小头木虱繁殖过程中的功能，为针对降低其繁殖力方面进行防控技术的研发奠定基础。PsmFAR-4和PsmFAR-21基因存在雌雄成虫不同部位表达不一致的现象，在雌成虫腹部的表达量显著高于头胸部，而在雄成虫头胸部却高于腹部，说明这2个基因可能在雌虫体内具有调节繁殖等功能，而在雄成虫体内则可能存在协调信息素的合成及释放功能，后续将进一步验证该功能，为FAR基因在桑小头木虱繁殖、信息素合成与释放功能的深入研究和阻断方式的研究提供依据。

基金

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现代农业产业技术体系项目(CARS-18-SYZ17)
海南省重点研发计划项目(ZDYF2022SHFZ319)

参考文献

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文献

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参考文献引证文献

排序方式：

[1]

卢芙萍, 耿涛, 武华周, 王娜玉, 汪永松, 娄德钊, 王树昌. 桑小头木虱Paurocephala sauteri Enderlein生物学特性研究[J]. 热带作物学报, 2020, 41(9): 1883-1888.

F P

, GENG

, WU

H Z

, WANG

N Y

, WANG

Y S

, LOU

D Z

, WANG

S C

. Biological characteristics of Paurocephala sauteri Enderlein (Hemiptera: Psylloidea: Psyllidae)[J]. Chinese Journal of Tropical Crops, 2020, 41(9): 1883-1888. (in Chinese)

[2]

李法圣. 中国木虱志[M]. 北京: 科学出版社, 1976: 226-227.

F S

. Psyllidomorpha of China[M]. Beijing: Science Press, 1976: 226-227. (in Chinese)

[3]

杨集昆, 李法圣. 小头木虱属五新种及母生滑头木虱新属种(同翅目：木虱科：小头木虱亚科)[J]. 武夷科学, 1986, 6: 45-58.

YANG

J K

, LI

F S

. Five new species of Paurocephalinae and a new species of Homalocephala (Homoptera: Psyllidae: Paurocephalinae)[J]. Wuyi Science Journal, 1986, 6: 45-58. (in Chinese)

[4]

CRAWFORD

D L

. The psyllidae of borneo[J]. The Philippine Journal of Science, 1920, 17(4): 353-359.

[5]

LIAO

, YANG

. First record of the mulberry psyllid Anomoneura mori Schwarz (Hemiptera: Psylloidea: Psyllidae) from Taiwan[J]. Journal of Asia-pacific Entomology, 2018, 21(2): 603-608.

[6]

MIFSYD

, BURCKHARD

. Taxonomy and phylogeny of the old world jumping plant-louse genus Paurocephala (Insecta, Hemiptera, Psylloidea)[J]. Journal of Natural History, 2002, 36(16): 1887-1986.

[7]

KUWAYAMA

. A revision of the Psyllidae of Taiwan[J]. Insecta Matsumurana, 1931, 5(3): 117-133.

[8]

卢芙萍, 王树昌. 海南桑树害虫识别及其防治图谱[M]. 北京: 中国农业科技出版社, 2019.

F P

, WANG

S C

. Identification and control map of mulberry pests in Hainan[M]. Beijing: China Agricultural Science and Technology Press, 2019. (in Chinese)

[9]

郑天祥, 钱雨农, 张大羽. 昆虫脂肪酸合成通路关键基因的研究进展[J]. 中国生物工程杂志, 2017, 37(11): 19-27.

ZHENG

T X

, QIAN

Y N

, ZHANG

D Y

. Key genes involved in fatty acids biosynthesis in insects[J]. China Biotechnology, 2017, 37(11): 19-27. (in Chinese)

[10]

敖艳. 扶桑绵粉蚧蜡质成分及合成相关基因far的研究[D]. 杭州: 浙江大学, 2019.

. Studies on the wax compositions and its biosynthesis related gene far in cotton mealybug, Phenacoccus solenopsis Tinsley (Hemiptera: Pseudococcidae)[D]. Hangzhou: Zhejiang University, 2019. (in Chinese)

[11]

TEERAWANICHPAN

, QIU

. Fatty acyl-CoA reductase and wax synthase from Euglena gracilis in the biosynthesis of medium-chain wax esters[J]. Lipids, 2010, 45(3): 263-273.

[12]

DEANDRÉS-GIL

, MORENO-PÉREZ

A J

, VILLOSLADAVALBUENA

, HALSEY

, MARTÍNEZ-FORCE

, GARCÉS

, KURUP

, BEAUDOIN

, SALAS

J J

, VENEGAS-CALERÓN

. Characterisation of fatty acyl reductases of sunflower (Helianthus annuus L.) seed[J]. Plant Science, 2024, 341: 111992.

[13]

DOAN

T T

, CARLSSON

A S

, HAMBERG

, BÜLOW

, STYMNE

, OLSSON

. Functional expression of five Arabidopsis fatty acyl-CoA reductase genes in Escherichia coli.[J]. Plant Physiology, 2009, 166(8): 787-796.

[14]

METZ

J G

, POLLARD

M R

, ANDERSON

, HAYES

T R

, LASSNER

M W

. Purification of a jojoba embryo fatty acyl-coenzyme A reductase and expression of its cDNA in high erucic acid rapeseed[J]. Plant Physiology, 2000, 122(3): 635-644.

[15]

HELLENBRAND

, BIESTER

E M

, GRUBER

, HAMBERG

, FRENTZEN

. Fatty acyl-CoA reductases of birds[J]. BMC Biochemistry, 2011, 12: 64.

[16]

CHENG

J B

, RUSSELL

D W

. Mammalian wax biosynthesis. I. Identification of two fatty acyl-coenzyme A reductases with different substrate specificities and tissue distributions[J]. Biological Chemistry, 2004, 279(36): 37789-37797.

[17]

HONSHO

, ASAOKU

, FUJIKI

. Posttranslational regulation of fatty acyl-CoA reductase 1, Far1, controls ether glycerophospholipid synthesis[J]. Biological Chemistry, 2010, 285(12): 8537-8542.

[18]

TONG

, WANG

, OMAR

M A A

, LI

, DING

, AO

, WANG

, LI

, JIANG

. Fatty acyl-CoA reductase influences wax biosynthesis in the cotton mealybug, Phenacoccus solenopsis Tinsley[J]. Communications Biology, 2022, 5(1): 1108.

[19]

TEERAWANICHPAN

, ROBERTSON

A J

, QIU

. A fatty acyl-CoA reductase highly expressed in the head of honey bee (Apis mellifera) involves biosynthesis of a wide range of aliphatic fatty alcohols[J]. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 2010, 40(9): 641-649.

[20]

DOU

, ZHANG

, JURENKA

. Functional identification of fatty acyl reductases in female pheromone gland and tarsi of the corn earworm, Helicoverpa zea[J]. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 2020, 116: 103260.

[21]

YANG

, ZHU

J Y

, GONG

Z J

, XU

D L

, CHEN

X M

, LIU

W W

, LIN

X D

, LI

Y F

. Transcriptome analysis of the Chinese white wax scale Ericerus pela with focus on genes involved in wax biosynthesis[J]. PLoS One, 2012, 7(4): e35719.

[22]

D T

, DAI

Y T

, CHEN

, WANG

X Q

, LI

Z D

, MOUSSIAN

, ZHANG

C X

. Ten fatty acyl-CoA reductase family genes were essential for the survival of the destructive rice pest, Nilaparvata lugens[J]. Pest Management Science, 2020, 76(7): 2304-2315.

[23]

李想. 烟粉虱脂酰辅酶A还原酶基因家族鉴定分析及功能研究[D]. 新乡: 河南科技学院, 2023.

. Identification and functional analysis of FAR gene family in Bemisia taba[D]. Xinxiang: Henan Institute of Science and Technology, 2023. (in Chinese)

[24]

LUO

, LIANG

S J

, LI

J Y

, XU

Z P

, LI

, ZHU

B Q

, LI

, LEI

C L

, LINDSEY

, CHEN

L Z

, JIN

S X

, ZHANG

X L

. A transgenic strategy for controlling plant bugs (Adelphocoris suturalis) through expression of double-stranded RNA homologous to fatty acyl-coenzyme A reductase in cotton[J]. New Phytologist, 2017, 215(3): 1173-1185.

[25]

FAN

, ZHANG

. Genome-wide identification of FAR gene family and functional analysis of NlFAR10 during embryogenesis in the brown planthopper Nilaparvata lugens[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2022, 223(Pt A): 798-811.

[26]

柳伟, 安佳琪, 高熹, 杨璞. 白蜡虫脂酰辅酶A还原酶基因家族鉴定及序列分析[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2022, 37(5): 743-752.

LIU

, AN

J Q

, GAO

, YANG

. Identification and sequence analyses of fatty acyl-CoA reductase gene family of the Chinese white wax scale insect (Ericerus pela)[J]. Journal of Yunnan Agricultural University (Natural Science), 2022, 37(5): 743-752. (in Chinese)

[27]

王瑜桑, 夏快飞, 张明永, 黄焕超, 严寒静, 张宏意, 何梦玲. 基于转录组测序的广藿香MYC基因家族鉴定与分析[J/OL]. 分子植物种, 1-10. (2024-01-25) [2025-02-08]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20240124.1734.006.html.

WANG

Y S

, XIA

K F

, ZHANG

M Y

, HUANG

H C

, YAN

H J

, ZHANG

H Y

, HE

M L

. Identification and analysis of MYC gene family based on transcriptome data in Pogostemon cablin[J/OL]. Molecular Plant Breeding, 1-10. (2024-01-25) [2025-02-08]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20240124.1734.006.html. (in Chinese)

[28]

CHEN

, CHEN

, ZHANG

, THOMAS

H R

, FRANK

M H

, HE

, XIA

. TBtools: an integrative toolkit developed for interactive analyses of big biological data[J]. Molecular Plant, 2020, 13(8): 1194-1202.

[29]

CHAO

J T

, KONG

Y Z

, WANG

, SUN

Y H

, GONG

D P

, LV

, LIU

G S

. MapGene2Chrom, a tool to draw gene physical map based on Perl and SVG languages[J]. Hereditas, 2015, 37(1): 91-97.

[30]

张国莉, 周倩怡, 余小奎, 赵胤泽, 张祥林, 田洁. 基于转录组的大蒜水通道蛋白基因家族的鉴定与分析[J]. 分子植物育种, 2024, 22(24): 8034-8047.

ZHANG

G L

, ZHOU

Q Y

, YU

X K

, ZHAO

Y Z

, ZHANG

X L

, TIAN

. Transcriptome-based identification and analysis of the garlic aquaporins gene family[J]. Molecular Plant Breeding, 2024, 22(24): 8034-8047. (in Chinese)

[31]

向春繁, 高青青, 袁成晓, 张笑云, 梁艳丽, 赵艳. 灯盏花NAC转录因子家族的鉴定及生物信息学分析[J/OL]. 分子植物育种, 1-17. (2024-07-18) [2025-02-10]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20240704.1132.002.html.

XIANG

C F

, GAO

Q Q

, YUAN

C X

, ZHANG

X Y

, LIANG

Y L

, ZHAO

. Identification and bioinformatics analysis of the NAC transcription factor family in Erigeron breviscapus[J/OL]. Molecular Plant Breeding, 1-17. (2024-07-18) [2025-02-10]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20240704.1132.002.html. (in Chinese)

[32]

沈红建, 邓锦清, 廖柏勇, 张碧佩, 李永泉, 王溢. 高州油茶NAC转录因子家族鉴定及生物信息学分析[J]. 湖南农业科学, 2024(7): 7-14.

SHEN

H J

, DNEG

J Q

, LIAO

B Y

, ZHANG

B P

, LI

Y Q

, WANG

. Identification and bioinformatics analysis of NAC transcription factor family in Camellia drupifera Loureiro[J]. Hunan Agricultural Sciences, 2024(7): 7-14. (in Chinese)

[33]

臧文蕊, 马明, 砗根, 哈斯阿古拉. 甜瓜BZR转录因子家族基因的全基因组鉴定及表达模式分析[J]. 生物技术通报, 2024, 40(7): 163-171.

ZANG

W R

, MA

, CHE

, HASI

A G L

. Genome-wide identification and expression pattern analysis of BZR transcription factor gene family of melon[J]. Biotechnology Bulletin, 2024, 40(7): 163-171. (in Chinese)

[34]

梁思佳. 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗盲蝽新种质[D]. 武汉: 华中农业大学, 2021.

LIANG

S J

. Plant-mediated RNAi to create a new cotton germplasm resistant to plant bugs[D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2021. (in Chinese)

[35]

金高晨, 李冉. 水稻与褐飞虱的分子互作研究进展[J/OL]. 生命科学, 1-24. (2024-12-12) [2025-01-02]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/31.1600.Q.20241211.1755.002.html.

JIN

G C

, LI

. Recent advances in rice and brown planthopper molecular interaction[J/OL]. Chinese Bulletin of Life Sciences, 1-24. (2024-12-12) [2025-01-02]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/31.1600.Q.20241211.1755.002.html. (in Chinese)

[36]

胡艳红. 白蜡虫脂酰辅酶A还原酶基因(EpFAR)的克隆表达与功能研究[D]. 南京: 南京林业大学, 2018.

Y H

. Cloning, expression characterization and functional assay of a fatty acyl-CoA reductase gene in scale insect, Ericerus pela Chavannes (Hemiptera: Coccoidea)[D]. Nanjing: Nanjing Forestry University, 2018. (in Chinese)

[37]

柳伟. 基于基因组分析的白蜡虫与两种内生真菌研究及白蜡虫FAR基因家族鉴定[D]. 北京: 中国林业科学研究院, 2022.

LIU

. Study on the Chinese white wax sale insect and two endogenous fungi based on genome analysis and identification of FAR gene family of the Chinese white wax sale insect[D]. Beijing: Chinsese Academy of Forestry, 2022. (in Chinese)

[38]

X L

, ZHENG

T X

, ZHENG

X W

, HAN

, CHEN

X X

, ZHANG

D Y

. Molecular characterization of two fatty acyl-CoA reductase genes from Phenacoccus solenopsis (Hemiptera: Pseudococcidae)[J]. Journal of Insect Science, 2016, 16(1): 49.

[39]

JASPERS

M H

, PFLANZ

, RIEDEL

, KAWELKE

, FEUSSNER

, SCHUH

. The fatty acyl-CoA reductase waterproof mediates airway clearance in Drosophila[J]. Developmental Biology, 2014, 385(1): 23-31.

[40]

胡艳红, 杨璞, 陈晓鸣, 徐冬丽. 白蜡虫脂酰辅酶A还原酶多克隆抗体的制备[J]. 林业科学研究, 2014, 27(1): 82-85.

Y H

, YANG

, CHEN

X M

, XU

D L

. Preparation of polyclonal antibody against Ericerus pela FAR1 peptide[J]. Forest Research, 2014, 27(1): 82-85. (in Chinese)

2025年第46卷第6期

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doi: 10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.022

接收时间：2025-01-14
首发时间：2026-06-24
出版时间：2025-06-25

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出版历史

收稿日期：2025-01-14
录用日期：2025-02-24

基金

现代农业产业技术体系项目(CARS-18-SYZ17)

海南省重点研发计划项目(ZDYF2022SHFZ319)

作者信息

^1.海南大学，海南海口　570228

通讯作者:

^* 王树昌（WANG Shuchang），E-mail：wangshuchang2001@163.com

卢芙萍（LU Fuping），E-mail：fuping_36@163.com。

参考文献

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https://castjournals.cast.org.cn/joweb/rdzwxb/CN/10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.022

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2种不同金属材料的力学参数

科 Family	属数 Number of genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)	属 Genus	种数 Number of species	占总种数比例 Percentage of total species (%)
鹅膏菌科Amanitaceae	2	11	5.26	鹅膏菌属 Amanita	10	4.78
小菇科 Mycenaceae	2	12	5.74	丝盖伞属 Inocybe	5	2.39
多孔菌科 Polyporaceae	8	14	6.70	蜡蘑属 Laccaria	5	2.39
红菇科 Russulaceae	3	23	11.00	小皮伞属 Marasmius	6	2.87
				小菇属 Mycena	11	5.26
				光柄菇属 Pluteus	5	2.39
				红菇属 Russula	17	8.13
				栓菌属 Trametes	5	2.39

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TxT

基因名称Gene name	正向引物（5′–3′）Forward primer (5′–3′)	反向引物（5′–3′）Reverse primer (5′–3′)
PsmFAR-1	ACACCCTTTCCAGCTCCTATGAG	CATGAGGCCCAGTATTGTTGTACC
PsmFAR-2	ATCAGTTGGAGGCGGGTAAGG	CACGGTGCTGCCACTATTCG
PsmFAR-3	TGTCCATGATGACCTCTTTAACCAG	CAGGGAACAAAGCATAAGAGTTTGC
PsmFAR-4	CCGCACTAATCCAATTCCCACTC	TTATCATGCCAACACTGGAAGATCC
PsmFAR-5	ATTGCAGGAGCGACTAGATTGTTAC	CAGGTTCTGGACTGGGAATTGTAAG
PsmFAR-6	AGCTGTTGGGTTAGGTATAATGAGA	CCAATTTCCCAACCTACAGCAA
PsmFAR-7	ATTGCATTTGTTACACGATCTCCAG	CCAATGGCATTAATTTTAGCAGGTG
PsmFAR-8	TGGAGTGGATGGACGCAGATAC	TTGTGTAGGTGTAACTGTTCGGATG
PsmFAR-9	CTGCAGGTGTAGGAATTGGGT	TCACCAGGTACCATATCAAGTTT
PsmFAR-10	CATCTACATCTCTACGGCATACGC	AATGAGTGCTGGTGAAAGACATCC
PsmFAR-11	ACAAGCCAGTTCTTTACCTCAAGC	GCAACAGCAGAGCGAGTCATC
PsmFAR-12	CAAAGTTGCCGATTTAGTTCCAGTG	TCTGTCGTGTATCATCGCTGTTATTG
PsmFAR-13	TCGTTCACTCATCAACAGCATTCTG	AAGCATCAACACTCATCCAAGTACC
PsmFAR-14	TGTACGGTCCAGTCGGTATGATG	GTCTTCTCTTGCGTTACCCACTTG
PsmFAR-15	ACCCTGTGCCTCCTGTGATAAG	AAATGACTGCCAGAGTATCCGTAAC
PsmFAR-16	AGCTGCTGTTACTATTCCTGTTGG	AGACCTTCTCAAGTGACTACATTAGC
PsmFAR-17	AGGAATCAGATTGCTACCCAGTTTG	CAGTTGGTCCATACAGGTTGTCTATC
PsmFAR-18	CAACTCGGATAAGACCTGCCATAATAC	ATGATGTTCCCGCCTGTATATTTCG
PsmFAR-19	AGGTACTTGATGTGGCATGATATACTG	TGTTGTACGGCGATTACCAGTTG
PsmFAR-20	AGGAATCAGCAAAGAAGATCAGCAG	AGAGGGTGGATACGTGAACTACTAC
PsmFAR-21	GGTGATGAAGCCTACAGAACTGATAG	CTGCCATTTGTTTAGTGAGCGTATATG
PsmFAR-22	GACACACTAACCGAAA	GACTACCAAATCTACG
PsmFAR-23	TCGCCCATCAGTCATTGTTTCTAC	CAAGTCCTACACCAACTGTCATACC
GAPDH	TGTTTGTTTGTGGAGT	GAATGATGTTTTGAGC

基因名称Gene name

正向引物（5′–3′）Forward primer (5′–3′)

反向引物（5′–3′）Reverse primer (5′–3′)

PsmFAR-1

ACACCCTTTCCAGCTCCTATGAG

CATGAGGCCCAGTATTGTTGTACC

PsmFAR-2

ATCAGTTGGAGGCGGGTAAGG

CACGGTGCTGCCACTATTCG

PsmFAR-3

TGTCCATGATGACCTCTTTAACCAG

CAGGGAACAAAGCATAAGAGTTTGC

PsmFAR-4

CCGCACTAATCCAATTCCCACTC

TTATCATGCCAACACTGGAAGATCC

PsmFAR-5

ATTGCAGGAGCGACTAGATTGTTAC

CAGGTTCTGGACTGGGAATTGTAAG

PsmFAR-6

AGCTGTTGGGTTAGGTATAATGAGA

CCAATTTCCCAACCTACAGCAA

PsmFAR-7

ATTGCATTTGTTACACGATCTCCAG

CCAATGGCATTAATTTTAGCAGGTG

PsmFAR-8

TGGAGTGGATGGACGCAGATAC

TTGTGTAGGTGTAACTGTTCGGATG

PsmFAR-9

CTGCAGGTGTAGGAATTGGGT

TCACCAGGTACCATATCAAGTTT

PsmFAR-10

CATCTACATCTCTACGGCATACGC

AATGAGTGCTGGTGAAAGACATCC

PsmFAR-11

ACAAGCCAGTTCTTTACCTCAAGC

GCAACAGCAGAGCGAGTCATC

PsmFAR-12

CAAAGTTGCCGATTTAGTTCCAGTG

TCTGTCGTGTATCATCGCTGTTATTG

PsmFAR-13

TCGTTCACTCATCAACAGCATTCTG

AAGCATCAACACTCATCCAAGTACC

PsmFAR-14

TGTACGGTCCAGTCGGTATGATG

GTCTTCTCTTGCGTTACCCACTTG

PsmFAR-15

ACCCTGTGCCTCCTGTGATAAG

AAATGACTGCCAGAGTATCCGTAAC

PsmFAR-16

AGCTGCTGTTACTATTCCTGTTGG

AGACCTTCTCAAGTGACTACATTAGC

PsmFAR-17

AGGAATCAGATTGCTACCCAGTTTG

CAGTTGGTCCATACAGGTTGTCTATC

PsmFAR-18

CAACTCGGATAAGACCTGCCATAATAC

ATGATGTTCCCGCCTGTATATTTCG

PsmFAR-19

AGGTACTTGATGTGGCATGATATACTG

TGTTGTACGGCGATTACCAGTTG

PsmFAR-20

AGGAATCAGCAAAGAAGATCAGCAG

AGAGGGTGGATACGTGAACTACTAC

PsmFAR-21

GGTGATGAAGCCTACAGAACTGATAG

CTGCCATTTGTTTAGTGAGCGTATATG

PsmFAR-22

GACACACTAACCGAAA

GACTACCAAATCTACG

PsmFAR-23

TCGCCCATCAGTCATTGTTTCTAC

CAAGTCCTACACCAACTGTCATACC

GAPDH

TGTTTGTTTGTGGAGT

GAATGATGTTTTGAGC

基因名称Gene name	氨基酸数量Number of amino acids	分子量Molecular weight/Da	理论等电点Theoretical pI	不稳定系数Instability index	脂肪系数Aliphatic index	平均亲水系数Grand average of hydropathicity	亚细胞定位Sub-cellular localization
PsmFAR-1	125	14 069.22	8.46	27.14	84.88	–0.145	细胞质
PsmFAR-2	136	15 441.99	6.24	38.93	93.24	–0.229	细胞质
PsmFAR-3	63	7313.43	4.93	44.58	109.84	–0.171	细胞质
PsmFAR-4	320	37 094.96	7.72	50.43	100.78	–0.114	细胞质
PsmFAR-5	511	59 699.28	8.58	37.55	98.20	–0.055	质膜
PsmFAR-6	390	44 414.84	5.97	39.26	97.18	–0.296	细胞质
PsmFAR-7	389	45 485.01	5.99	47.96	95.71	–0.502	细胞质
PsmFAR-8	460	52 389.21	8.97	35.77	101.70	–0.085	细胞质
PsmFAR-9	292	33 809.20	8.75	39.61	98.12	–0.152	细胞质
PsmFAR-10	548	63 607.33	8.09	33.63	94.43	–0.146	细胞质
PsmFAR-11	531	60 625.64	9.17	37.34	96.93	–0.101	细胞质
PsmFAR-12	533	61 534.50	8.10	35.27	98.20	–0.086	线粒体
PsmFAR-13	528	60 403.13	9.22	37.27	96.70	–0.016	细胞质
PsmFAR-14	548	62 576.78	8.62	30.86	102.04	–0.039	质膜
PsmFAR-15	487	55 425.40	8.76	40.77	92.53	–0.170	细胞质
PsmFAR-16	507	58 469.31	8.83	38.77	98.24	–0.097	细胞质
PsmFAR-17	498	57 828.15	8.84	32.08	94.14	–0.186	细胞质
PsmFAR-18	507	58 439.00	8.94	40.82	99.84	–0.103	细胞质
PsmFAR-19	508	57 996.71	9.22	46.88	105.31	0.086	细胞质
PsmFAR-20	560	64 518.52	7.97	43.17	94.82	–0.088	细胞质
PsmFAR-21	508	58 050.82	9.19	30.09	98.23	–0.115	细胞核
PsmFAR-22	570	65 649.55	6.93	34.13	99.00	–0.062	质膜
PsmFAR-23	575	66 180.04	8.91	35.89	104.78	–0.026	质膜

基因名称Gene name

氨基酸数量Number of amino acids

分子量Molecular weight/Da

理论等电点Theoretical pI

不稳定系数Instability index

脂肪系数Aliphatic index

平均亲水系数Grand average of hydropathicity

亚细胞定位Sub-cellular localization

PsmFAR-1

125

14 069.22

8.46

27.14

84.88

–0.145

细胞质

PsmFAR-2

136

15 441.99

6.24

38.93

93.24

–0.229

细胞质

PsmFAR-3

7313.43

4.93

44.58

109.84

–0.171

细胞质

PsmFAR-4

320

37 094.96

7.72

50.43

100.78

–0.114

细胞质

PsmFAR-5

511

59 699.28

8.58

37.55

98.20

–0.055

质膜

PsmFAR-6

390

44 414.84

5.97

39.26

97.18

–0.296

细胞质

PsmFAR-7

389

45 485.01

5.99

47.96

95.71

–0.502

细胞质

PsmFAR-8

460

52 389.21

8.97

35.77

101.70

–0.085

细胞质

PsmFAR-9

292

33 809.20

8.75

39.61

98.12

–0.152

细胞质

PsmFAR-10

548

63 607.33

8.09

33.63

94.43

–0.146

细胞质

PsmFAR-11

531

60 625.64

9.17

37.34

96.93

–0.101

细胞质

PsmFAR-12

533

61 534.50

8.10

35.27

98.20

–0.086

线粒体

PsmFAR-13

528

60 403.13

9.22

37.27

96.70

–0.016

细胞质

PsmFAR-14

548

62 576.78

8.62

30.86

102.04

–0.039

质膜

PsmFAR-15

487

55 425.40

8.76

40.77

92.53

–0.170

细胞质

PsmFAR-16

507

58 469.31

8.83

38.77

98.24

–0.097

细胞质

PsmFAR-17

498

57 828.15

8.84

32.08

94.14

–0.186

细胞质

PsmFAR-18

507

58 439.00

8.94

40.82

99.84

–0.103

细胞质

PsmFAR-19

508

57 996.71

9.22

46.88

105.31

0.086

细胞质

PsmFAR-20

560

64 518.52

7.97

43.17

94.82

–0.088

细胞质

PsmFAR-21

508

58 050.82

9.19

30.09

98.23

–0.115

细胞核

PsmFAR-22

570

65 649.55

6.93

34.13

99.00

–0.062

质膜

PsmFAR-23

575

66 180.04

8.91

35.89

104.78

–0.026

质膜

基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%	基因名称Gene name	α-螺旋Alpha helix/%	延伸链Extended strand/%	无规则卷曲Random coil/%
PsmFAR-1	20.00	21.60	58.40	PsmFAR-13	48.67	14.02	37.31
PsmFAR-2	58.82	15.44	25.74	PsmFAR-14	47.45	13.32	39.23
PsmFAR-3	34.92	15.87	49.21	PsmFAR15	42.51	15.40	42.09
PsmFAR-4	42.19	16.88	40.94	PsmFAR-16	46.75	14.60	38.66
PsmFAR-5	48.53	14.29	37.18	PsmFAR-17	46.99	14.26	38.76
PsmFAR-6	48.21	15.38	36.41	PsmFAR-18	46.94	14.60	38.46
PsmFAR-7	44.99	13.37	41.65	PsmFAR-19	49.21	14.76	36.02
PsmFAR-8	44.13	15.65	40.22	PsmFAR-20	45.18	13.04	41.79
PsmFAR-9	40.41	17.81	41.78	PsmFAR-21	45.08	14.57	40.35
PsmFAR-10	46.17	13.14	40.69	PsmFAR-22	44.91	12.81	42.28
PsmFAR-11	47.83	13.94	38.23	PsmFAR-23	48.87	13.57	37.57
PsmFAR-12	47.65	13.51	38.84

基因名称Gene name

α-螺旋Alpha helix/%

延伸链Extended strand/%

无规则卷曲Random coil/%

基因名称Gene name

α-螺旋Alpha helix/%

延伸链Extended strand/%

无规则卷曲Random coil/%

PsmFAR-1

20.00

21.60

58.40

PsmFAR-13

48.67

14.02

37.31

PsmFAR-2

58.82

15.44

25.74

PsmFAR-14

47.45

13.32

39.23

PsmFAR-3

34.92

15.87

49.21

PsmFAR15

42.51

15.40

42.09

PsmFAR-4

42.19

16.88

40.94

PsmFAR-16

46.75

14.60

38.66

PsmFAR-5

48.53

14.29

37.18

PsmFAR-17

46.99

14.26

38.76

PsmFAR-6

48.21

15.38

36.41

PsmFAR-18

46.94

14.60

38.46

PsmFAR-7

44.99

13.37

41.65

PsmFAR-19

49.21

14.76

36.02

PsmFAR-8

44.13

15.65

40.22

PsmFAR-20

45.18

13.04

41.79

PsmFAR-9

40.41

17.81

41.78

PsmFAR-21

45.08

14.57

40.35

PsmFAR-10

46.17

13.14

40.69

PsmFAR-22

44.91

12.81

42.28

PsmFAR-11

47.83

13.94

38.23

PsmFAR-23

48.87

13.57

37.57

PsmFAR-12

47.65

13.51

38.84

编号^*No.	基因Gene	功能预测Function prediction	相关物种Related species	相关基因Related gene	GenBank登录号GenBank accession
Ⅱ	PsmFAR-11, PsmFAR-12	蜡质合成	Apis mellifera	AmFAR	ADJ56408.1
Ⅳ	PsmFAR-19, PsmFAR-21	繁殖、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR4	AWJ25028.1
Ⅴ	PsmFAR-1, PsmFAR-2, PsmFAR-8,PsmFAR-13	发育、繁殖、蜡质合成、信息素合成	Chilo suppressalis	CsFAR	UVF71834.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR3	AWJ25030.1
	Nilaparvata lugens	NlFAR10	AWJ25021.1
	Ericerus pela	EpFAR	AGK27745.1
	Maruca vitrata	MvFAR	UEV87807.1
Ⅶ	PsmFAR-4, PsmFAR-5, PsmFAR-6,PsmFAR-7, PsmFAR-9	繁殖、蜡质合成、体表角质层合成	Nilaparvata lugens	NlFAR1	AWJ25018.1
	NlFAR8	AWJ25023.1
	NlFAR11	XP_022197920.2
	NlFAR12	XP_022197928.2
	Phenacoccus solenopsis	PsFAR2	ANN23960.1
Ⅷ	PsmFAR-10, PsmFAR-14, PsmFAR-20,PsmFAR-22, PsmFAR-23	蜡质合成	Phenacoccus solenopsis	PsFAR1	UYO73019.1
Ⅸ	PsmFAR-3, PsmFAR-15, PsmFAR-16,PsmFAR-17, PsmFAR-18	发育、繁殖、体表角质层合成、解毒	Phenacoccus solenopsis	PsFAR3	ANN23959.1
	Drosophila melanogaster	DmFAR	NP_651652.2
	Nilaparvata lugens	NlFAR6	AWJ25025.1
	NlFAR7	AWJ25024.1
	NlFAR9	AWJ25022.1

编号^*No.

基因Gene

功能预测Function prediction